КАРТОЧКА ПРОЕКТА ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ И ПОИСКОВЫХ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ,
ПОДДЕРЖАННОГО РОССИЙСКИМ НАУЧНЫМ ФОНДОМ

Информация подготовлена на основании данных из Информационно-аналитической системы РНФ, содержательная часть представлена в авторской редакции. Все права принадлежат авторам, использование или перепечатка материалов допустима только с предварительного согласия авторов.

 

ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ


Номер 19-14-00273

НазваниеУстановление структуры, аннотация генов биосинтеза капсульных полисахаридов для классификации штаммов нозокомиального патогена Acinetobacter baumannii и разработка подходов к созданию вакцины против ацинетобактерий

РуководительПерепелов Андрей Вячеславович, Кандидат химических наук

Организация финансирования, регион Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт органической химии им. Н.Д. Зелинского Российской академии наук, г Москва

Период выполнения при поддержке РНФ 2022 г. - 2023 г. 

Конкурс Конкурс на продление сроков выполнения проектов, поддержанных грантами Российского научного фонда по приоритетному направлению деятельности Российского научного фонда «Проведение фундаментальных научных исследований и поисковых научных исследований отдельными научными группами» (35).

Область знания, основной код классификатора 04 - Биология и науки о жизни, 04-203 - Общая биохимия

Ключевые словабактерия, Acinetobacter baumannii, нозокомиальный патоген, иммунная антисыворотка, классификация, генный локус, биосинтез полисахарида, гликозилтрансфераза, антигенное разнообразие, бактериофаг, деполимераза, капсульный полисахарид, структура полисахарида, конъюгатная вакцина, гликоконъюгат

Код ГРНТИ34.27.29


СтатусУспешно завершен


 

ИНФОРМАЦИЯ ИЗ ЗАЯВКИ


Аннотация
Бактерия Acinetobacter baumannii является одним из важнейших внутрибольничных патогенов, вызывающих пневмонию, менингит, бактериемию и другие заболевания, опасные для пациентов с ослабленной иммунной системой. Во время эпидемии COVID-19 в 2020 году было показано, что пациенты, находящиеся на лечении с использованием различных медицинских приборов (ИВЛ, ИКМО), часто также заражались коинфекцией, вызванной A. baumannii. Лечение таких коинфекций осложнено тем, что ацинетобактерия входит в группу патогенов ESCAPE, показывающих высокую степень антибиотикорезистентности. Одним из факторов вирулентности A. baumannii, в том числе высокой антибиотикоустойчивости, является капсульный полисахарид (КПС), который образует толстый защитный слой (капсулу) вокруг бактериальной клетки. КПС является основным поверхностным антигеном A. baumannii. Вследствие полиморфизма капсульного локуса биосинтеза КПС (K локус, KL) эти поверхностные гликополимеры отличаются большим структурным разнообразием (к настоящему времени идентифицировано более 140 KL-типов). Настоящий проект является продолжением проекта, поддержанного в 2019-2021 гг. фондом РНФ (грант № 19-14-00273), и посвящен исследованиям в области структурного анализа капсульных полисахаридов ацинетобактера, изучению генных кластеров их биосинтеза, выявлению специфических бактериофагов, способных расщеплять одну гликозидную связь в К-звене (повторяющемся звене КПС). На основании таких выделенных и полностью охарактеризованных по химической структуре олигосахаридных К-звеньев путем их конъюгации с белком-носителем нами на этапе 2019-2021 гг. уже были созданы и испытаны на биологических моделях (лабораторные мыши) первые эффективные прототипы вакцин против пневмонии и других заболеваний, вызываемых ацинетобактером. Наиболее эффективные конъюгаты вызывали выработку высокого титра антител к КПС ряда штаммов ацинетобактера и протективные антитела обеспечивали достаточный иммунный ответ на протяжении до 18 месяцев. За три года выполнения проекта № 19-14-00273 за 2019-2021 гг. нами было опубликовано 19 статей (все в международных реферируемых журналах), в том числе 9 в изданиях с квартилем Q1. Это демонстрирует востребованность и актуальность нашего исследования с фундаментально-научной, практической и с наукометрической позиций. В ходе выполнения данной работы планируется продолжить работы по исследованию структур КПС A. baumannii, что необходимо для поиска бактериофагов со специфическими гликозил-гидролазами. Как и на предыдущем трехгодичном этапе работы, гены фаговых гликозил-гидролаз (литические деполимеразы) будут аннотированы, будут клонированы в векторах E. coli, рекомбинантные белки будут выделены и использованы для деполимеризации КПС ацинетобактера. Выделенные олигосахариды будут охарактеризованы методами ЯМР и масс-спектрометрии, будет осуществлена их коъюгация с белком и полученные препараты будут испытаны на биологических моделях. Особое внимание будет сосредоточено на создании таких конъюгаов, которые вызывали бы эффективный иммунный ответ на несколько родственных по структуре КПС штаммов ацинетобактера. Все запланированные исследования являются новыми, актуальными и, как минимум, соответствуют мировому уровню в данной сфере, то есть в области персонифицированной медицины, биоорганической химии, микробиологии и вирусологии.

Ожидаемые результаты
Ожидаемые результаты имеют высокую научную значимость, так как они расширяют знания о химическом строении и путях биосинтеза капсульных полисахаридов (KПС), являющихся основным компонентом защитной капсулы A. baumannii. Будут выяснены механизмы расщепления КПС деполимеразами хвостовых шипов специфических бактериофагов. Будут подобраны условия гидролиза КПС как в кислых, так и в щелочных условиях. На основе выделенных олигосахаридных фрагментов КПС, соответствующих двум или трем K-звеньям КПС, будут получены иммунопрепараты, которые будут испытаны в качестве кандидатных безопасных вакцин для борьбу с инфекциями, вызываемыми A. baumannii. Планируется получение следующих основных результатов: 1) Будут установлены структуры ранее неизученных КПС значительной группы клинических штаммов A. baumannii, представляющих различные капсульные типы, которые будут выделены как в России, так и за рубежом (в Австралии и других странах). В нашем распоряжении уже сейчас имеются штаммы A. baumannii, представляющие 10 неисследованных K-типов, и мы планируем по ходу выполнения проекта получить из российских больниц и из других стран по запросу представителей других K-типов. 2) Будут подобраны бактериофаги, специфически инфицирующие различные капсульные типы A. baumannii, в том числе распространенные в России штаммы. Будут сконструированы рекомбинантные рецепторные белки хвостовых шипов бактериофагов, обладающие деполимеразной активностью в отношении КПС. Будут установлены структуры продуктов расщепления КПС этими ферментами (10-15 примеров специфических расщеплений) и тем самым определены механизмы деполимеризации КПС (гидролитический механизм с расщеплением гликозидной связи или полисахарид-лиазный механизм по пути бета-элиминирования в остатке уроновой кислоты). Будут также проведены исследования возможностей химического гидролиза КПС как в щелочных, так и в кислотных условиях. 3) Олигосахаридные фрагменты, соответствующие двум или трем повторяющихся звеньям КПС, которые будут получены в результате расщепления КПС деполимеразами бактериофагов и олигосахариды, выделенные после кислотного или щелочного гидролиза, будут конъюгированы с различными белковыми носителями. Полученные неогликоконьюгаты будут охарактеризованы по молекулярной массе и соотношению полисахарид–белок с помощью масс-спектрометрии MALDI-Tof и электрофореза. Их молекулярную массу планируется оценивать также с помощью гель-фильтрации. Олигосахариды могут быть также использованы для со-кристаллизации с белками деполимераз для определения активного центра белков при помощи рентгеноструктурного анализа. 4) Будут разработаны и оптимизированы схемы иммунизации животных (лабораторных мышей) различными гликоконъюгатами. Оценка гуморального иммунного ответа будет определяться по присутствию в крови специфических антител в течении четырех и более месяцев после иммунизации, и будет показана способность штамм-специфических гликоконьюгатов вызывать устойчивый иммунный ответ. Иммунные антисыворотки будут охарактеризованы по содержанию в них антител против КПС и по опсонизирующему потенциалу. Оценка опсонизирующего потенциала будет определена по способности антител ингибировать рост клеток A. baumannii в культуре. Будет продемонстрирована эффективность протективных антител к испытуемым гликоконъюгатов на модели острой ацинетобактерной инфекции у мышей, вызываемой клиническими штаммами A. baumannii разных капсульных типов. Будут выяснены структурные особенности КПС, влияющие на развитие иммунного ответа и выработку антител. Будет проанализирована перекрестная реактивность антител по отношению к КПС различных штаммов A. baumannii, содержащих потенциально перекрестно-реагирующие эпитопы, и будут выявлены эпитопы, способные вызывать устойчивый иммунитет к этим штаммам. По результатам анализа для дальнейшего исследования в качестве иммунопрепаратов будут выбраны гликоконъюгаты, индуцирующие антитела с наиболее широкой перекрестной реактивностью. На основании сравнения свойств полученных иммунных сывороток будет выбрана оптимальная схема иммунизации и будут сделаны выводы о перспективах использования конкретных гликоконъюгатов, против которых будут получены иммунные сыворотки, в качестве кандидатных вакцин. Ожидаемые результаты в части установления строения КПС и выяснения механизмов расщепления КПС рецепторными белками специфических бактериофагов будут новыми и будут полностью соответствовать мировому уровню исследований в области биохимии полисахаридных антигенов патогенных бактерий. Новизна этой части исследования обусловлена а) отсутствием до начала нашего исследования в 2019-ом году данных о получении фрагментов КПС с помощью деполимераз бактериофагов; b) применение кислотного и щелочного гидролиза КПС для получения олигосахаридных фрагментов КПС A.baumannii; c) отсутствие данных по в части получения и испытания гликоконъюгатных иммунопрепаратов против инфекций, вызываемых A. baumannii, проект коррелируют с общемировыми тенденциями использования конъюгатных вакцин на основе поверхностных полисахаридов бактерий для профилактики и терапии инфекционных заболеваний. Новизна и значимость этой части исследования заключается в разработке адекватных методов и схем иммунизации и оценке опсонизирующей активности антител направленных к определенным структурам КПС. Впервые будет продемонстрирована эффективность протективных антител к испытуемым гликоконъюгатам на модели острой ацинетобактерной инфекции у мышей. С учетом важности A.baumannii как широкораспространенного нозокомиального патогена с высокой антибиотикоустойчивостью безопасные вакцины против инфекций, вызываемых этим патогеном, на основе неогликоконъюгатов будут востребованы здравоохранением.


 

ОТЧЁТНЫЕ МАТЕРИАЛЫ


Аннотация результатов, полученных в 2022 году
За отчетный период, в рамках проекта в соответствие с планами было проведено как структурно-генетическое, так и иммунологическое исследование пяти штаммов, выделенных в различных городах России и Германии: Смоленск (штамм K127, K98, К218), Иркутск (штамм К135, изолят RES-546), К89 (Саарленд, Германия). Таким образом, количество объектов исследования полностью соответствовало и даже превышало план работы (см. пункт 1.1. «Заявленный в проекте план работы научного исследования на отчетный период»). Молекулярное типирование этих штаммов показало, что некоторые из них относятся к К-типам, которых ранее не были исследованы в отношении строения и биосинтеза КПС, Эти данные подтверждают независимую диверсификация К-полисахаридов ацинетобактера в различных географических регионах. Штаммы культивировали, биомассу экстрагировали водным фенолом и полученные КПС очищали гель-хроматографией. Состав КПС определяли с помощью ГЖХ-хроматографии ацетатов полиолов, полученных дериватизацией моносахариднов, высвобожденных полным кислотным гидролиза КПС. Строение КПС устанавливали методами одномерной и двумерной спектроскопии ЯМР на ядрах 1Н и 13С и подтверждали методами избирательного расщепления, такими как а) распад по Смиту, включающий избирательное периодатное окисление и мягкий кислотный гидролиз связей окисленных моносахаридов, б) избирательный сольволиз трифторуксусной кислотой. Основными компонентами исследованных КПС оказались такие широко распространенные в бактериальных углеводах моносахариды, как D-глюкоза, D-галактоза, N-ацетил-D-глюкозамин (D-GlсNAс и N-ацетил-D-галактозамин (D-GalNAc). Также в некоторых КПС были обнаружены необычные, либо уникальные компоненты. Объекты исследования. Описание проделанной работы и результаты: 1) Acinetobacter baumannii K89 (изолят LUH5552). КПС исследован спектроскопией ЯМР, методами компонентного анализа, а также с помощью селективного расщепления по Смиту. Капсульный полисахарид содержал в К-звене D-Fucp3NAc, редко встречающийся компонент. Боковая цепь состояла из звеньев состава β-D-Glcp-(1→2)-β-D-Fucp3NAc-(1→6)-D-Glcp, присоединенного по положению 4 к D-GalpNAc к моносазариду в главной цепи двухкомпонентного К-звена →3)-α-D-GalpNAc-(1→3)-β-D-GlcpNAc-(1→ 2) Acinetobacter baumannii K98 (изолят REV-1184), ). Структура капсулярного полисахарида K98 была установлена методами сахарного анализа, ЯМР-спектроскопии и масс спектрометрии ESI-MS. В составе, кроме обычных моносазхаридов, были обнаружены 2-ацетамидо-2-дезокси-D-галактуроновая кислота (D-GalpNAcA), и хиновозамин (D-QuipNAc), а остаток GalpNAc являлся ацеталированным производным с (R)-4,6-пировиноградной кислоты. 3) Acinetobacter baumannii K218 (изолят 52-249). Данный КПС отличался наличием в составе разветвленного тетрасахаридного повторяющегося звена высшего девятиуглеродного сахара - псевдаминовой кислоты ( 5,7-диацетамидо-3,5,7,9-тетрадезокси-L-глицеро-L-манно-нон-2-улозоновой кислоты, Pse5Ac7Ac) в боковой цепи. Оперон psaABCIJF, включающий шесть генов, был идентифицирован в составе генного кластера штамма K218. Интересно, что КПС K218, как выяснилось, обладал близким структурным сходством с ранее исследованным штаммом Acinetobacter baumannii К46, а разница заключалась в том, что у К46 остаток Pse5Ac7Ac был О-ацетилированным по положению 4. Это позволило точно аннотировать гены гликозил трансфераз, переносящих остаток Pse в этих двух штаммах – у штамма К218 это оказался фермент KpsS3, ответственный за образование связи Pse-(2-6)-D-Galp, ген которого был депонирован в базу данных GenBank. Сама по себе зада идентификации гликозил трансфераз практически невозможна без сравнения структур родственных полисахаридов и их генных кластеров биосинтеза. 4) Acinetobacter baumannii K135 (изолят RES-546). Структуры КПС A. baumannii и соответствующие генные кластеры биосинтеза КПС отличаются значительным разнообразием, и в то же время многие из них являются родственными друг другу. Особенностью КПС многих типов A. baumannii является присутствие в их составе изомеров 5,7 диамино-3,5,7,9-тетрадезоксинон-2-улозоновой кислоты. Три из них – ацинетаминовая кислота (L глицеро-L-альтро-изомер), 8-эпиацинетаминовая кислота (D глицеро-L-альтро-изомер) и 8 эпипсевдаминовая кислота (D-глицеро-L-манно-изомер) – в других природных углеводах до настоящего времени не обнаружены. Конкретно 8-эпимер псевдаминовой кислоты (8ePse5Ac7Aс), образующийся из Pse5Ac7A через промежуточное 8-кетопроизводное, встречается значительно реже; он присутствует в КПС типов K58 (штамм BAL-062) и K135 (штамм Res546, ранее также относившийся к типу K58). Данное уникальное производное (8ePse5Ac7Aс) было идентифицировано и описано в трех наших статьях в 2022 году в ходе установления структуры КПС 135. Выяснилось, что, как и в случае вышеприведенного штамма K218, генный кластер имеет такой же оперон, состоящий из шести генов и отвечающий за синтез Pse5Ac7Ac. Но ген, отвечающий за конверсию Pse5Ac7Ac в 8ePse5Ac7Ac в кластере не был обнаружен (вероятно, он находится в хромосоме вне кластера). Таким образом, требуется провести дополнительные исследования для выявления пути биосинтеза 8-эпи-псевдаминовой кислоты. 5) Последовательности генов в геномных кластерах биосинтеза КПС A. baumannii между консервативными генами fkpA и lldP, фланкирующими К-локус, были получны путем сборки коротких ридов в контиги, используя программу SPAdes. Cиквенсы всех кластеров депонировали в базе данных GenBanК, и входящие в кластеры гены аннотировали сравнением с последовательностями в доступных базах данных (аннотации генных кластеров доступны также файлах приложенных к отчету статьях в формате PDF. В целом, генетические данные полностью согласуются с установленными нами структурами КПС. В совокупности структурно-генетические данные вносят существенный вклад в разработку молекулярной основы для классификации штаммов ацинетобактера по К-антигенам и прояснению путей их эволюции. 6) Для получения новых иммунопрепаратов на основе белковых конъюгатов олигосахаридных фрагментов КПС как прототипов вакцин против инфекций, вызываемых ацинетобактером, подобраны бактериофаги, специфически расщепляющие КПС (эти работы были описаны в предыдущем отчете). Непосредственно на этапе 2022 года мы закончили исследование другого типа гликоконьюгатной вакцины, полученной методом селективного перийодатного расщепления КПС A. baumannii K9 с последующей конъюгацией полученных олигосахаридных фрагментов разной длины (разделенных гель-хроматографией) с набором инертных белков-носителей (бычий сывороточный альбумин - БСА, овальбумин, гемоцианин). Было выяснено, что наибольшей эффективностью обладает гликонъюгатная вакцина на основе БСА с димерами К-звеньев. Анализ полученных данных показывает, что практически все используемые для иммунизации конъюгаты фрагментов КПС типа К9 с белками-носителями вызывают длительный иммунный ответ. Так, титр антител, как суммарных, так и иммуноглобулинов класса М, против КПС типа 9 сохранялся в сыворотке экспериментальных мышей достаточно стабильным в течение 10 месяцев после последней иммунизации. При этом также стабильным сохранялся и титр опсонизации исследуемых сывороток. Полученные данные по исчерпывающим биологическим испытаниям на животных были опубликованы в высокорейтинговом журнале Microbiology Spectrum. Все полученные на этапе 2022 года данные были представлены нами в восьми статьях с упоминанием о поддержке Фонда РНФ, из которых в отчете (см пункт 1.7) представлены шесть. С учетом того, что 5 статей принадлежат к первому квартилю (Q1), то коллектив уже на первом году превысил заявленные требования к публикационным показателям. Таким образом, план работы на 2022 году был полностью выполнен.

 

Публикации

1. Арбатский Н. П., Касимова А. А., Шашков А. С., Шнейдер М. М., Попова А. В., Шагин Д. А., Шеленков А. А., Михайлова Ю. В., Янушевич Ю. Г., Холл Р. М., Книрель Ю. А., Кеньон Дж. Дж. Involvement of a Phage-Encoded Wzy Protein in the Polymerization of K127 Units To Form the Capsular Polysaccharide of Acinetobacter baumannii Isolate 36-1454 microbiology spectrum, 10(3):e0150321 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.1128/spectrum.01503-21

2. Арбатский Н. П.,Шашков А. С. ,Шнейдер М. М. ,Попова А. В. ,Касимова А. А. ,Мирошников К. А. ,Книрель Ю. А. ,Холл Р. М. ,Кеньон Дж. Дж. The K89 capsular polysaccharide produced by Acinetobacter baumannii LUH5552 consists of a pentameric repeat-unit that includes a 3-acetamido-3,6-dideoxy-d-galactose residue International Journal of Biological Macromolecules, 217:515-521 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2022.07.085

3. Касимова А. А. , Дудник А. Г., Шашков А. С., Шнейдер М. М., Кристоферсон А., Шеленков А.А., Михайлова Ю. В., Кеньон Дж. Дж., Книрель Ю. А. The K218 capsular polysaccharide produced by Acinetobacter baumannii isolate 52-249 includes 5,7-di-N-acetylpseudaminic acid linked by a KpsS3 glycosyltransferase International Journal of Biological Macromolecules, Volume 218, 1 October 2022, Pages 310-316 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2022.07.135

4. Касимова А. А. ,Шнейдер М. М. ,Эдельштейн М. В. ,Джапарова А. А. ,Шашков А. С. ,Книрель Ю. А. ,Кеньон Дж. Дж. Structure of the K98 capsular polysaccharide from Acinetobacter baumannii REV-1184 containing a cyclic pyruvic acid acetal International Journal of Biological Macromolecules, Volume 218, Pages 447-455 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2022.07.136

5. Руденко Н., Каратовская А., Замятина А., Шепеляковская А., Семушина С., Бровко Ф., Шпирт А., Торгов В., Колотыркина Н., Зинин А., Касимова А., Перепелов А., Шнейдер М., Книрель Ю. Immune Response to Conjugates of Fragments of the Type K9 Capsular Polysaccharide of Acinetobacter baumannii with Carrier Proteins Microbiology spectrum, 26;10(5):e0167422 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.1128/spectrum.01674-22

6. Шашков А. С., Касимова А. А., Арбатский Н. П., Сенченкова С. Н., Перепелов А. В., Дмитренок А. С., Чижов А. О., Книрель Ю. А., Шнейдер М. М., Попова А. В., Кеньон Дж. Дж. Complete chemical structure of the K135 capsular polysaccharide produced by Acinetobacter baumannii RES-546 that contains 5,7-di-N-acetyl-8-epipseudaminic acid Carbohydrate research, 523:108726 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.1016/j.carres.2022.108726


Аннотация результатов, полученных в 2023 году
Конкретные научные результаты в соответствие с планом проводились по трем главным направлениям: 1) Структурное исследование капсулярных полисахаридов (КПС) Acinetobacter baumannii 2) Генетическое исследование локусов биосинтеза КПС ацинетобактера (KL-локусы) 3) Исследование расщепления (КПС) ацинетобактера деполимеразами (гликозидазами) хвостовых шипов специфических бактериофагов. Всего в работе на этапе 2023-го года было изучено 3 новых штамма ацинетобактера (K70, K3-v1 и K135) с ранее неизвестными структурами КПС. Еще были использованы более 10-ти штаммов, ранее изученных нами и другими исследователями, выделенных в различных городах России, Китая, Чехии, Италии и США. Для штаммов ацинетобактера были подобраны бактериофаги, были выделены рекомбинантные белки-деполимеразы хвостовых шипов с гликозидазной активностью для изучения специфики расщепления КПС ацинетобактеров. Это направление исследований открывает возможность получения гликонъюгатных вакцин против антибиотико-резистентных штаммов A. baumannii. Молекулярное типирование штаммов показало, что некоторые из них относятся к К-типам, которых ранее не были исследованы в отношении строения и биосинтеза КПС. Генетические данные полностью согласуются с установленными структурами КПС. В совокупности структурно-генетические данные вносят существенный вклад в разработку молекулярной основы для классификации штаммов ацинетобактера по К-антигенам и прояснению путей их эволюции. Штаммы A. baumannii K70 (изолят SGH0807, Сингапур) и A. baumannii K3-v1 (изолят AB5001, Смоленск) были впервые охарактеризованы в структурно-генетическом плане и показано их близкое генетическое родство с другими штаммами ацинетобактера (K9 и K3, соответственно) при различии в структурах КПС. Основными компонентами исследованных КПС оказались широко распространенные в бактериальных углеводах моносахариды. Но также в некоторых КПС были обнаружены необычные, либо уникальные компоненты, такие как 2-N-ацетил-галактуроновая кислота (GalpNAcA) в КПС К70, 2,3-N-диацетил-4-O-ацетат-глюкуроновая кислота (GlсpNAc3NAc4OAcA) в КПС К3 и 8-эпимер псевдаминовой кислоты (8ePse5Ac7Aс) - последний в составе КПС был обнаружен впервые в природе. Объекты исследования: 1) Acinetobacter baumannii K70 (изолят SGH080, Сингапур) Повторяющееся звено КПС A. baumannii K70 представляло собой разветвленный тетрасахарид, включающий два остатка L-FucpNAc, один остаток D-FucpNAc и D-GalpNAcA: -3)[aLFucpNAс(1-4]-aDGalpNAcA(1-3)aLFucpNAc(1-3)bDFucpNAc(1- Были подобраны бактериофаги AM24, BS46 и APK09, чьи рекомбинантные деполимеразы хвостовых шипов обладали специфической гликозидазной активностью и расщепляли только одну гликозидную связь, а именно βDFucpNAc(1-4)αDGalpNAcA. Это позволило получить мономер повторяющегося звена: [aLFucpNAс(1-4]-aDGalpNAcA(1-3)aLFucpNAc(1-3)DFucpNAc(1- а также димер: aLFucpNAс(1-4]-aDGalpNAcA(1-3)aLFucpNAc(1-3)bDFucpNAc(1--3)[aLFucpNAс(1-4]-aDGalpNAcA(1-3)aLFucpNAc(1-3)bDFucpNAc(1- Примечательно, что штамм К70 имел идентичную Wzy-полимеразу с Wzy-полимеразой из штамма A. baumannii К9, хотя инициирующие сахара у них были разные – DFucpNAc и βDGlcpNAc, соответственно. Полногеномное секвенирование и поиск альтернативной полимеразы показал, что таковых у двух штаммов не имеется. Таким образом, получалось, что Wzy_К9-полимераза обладает бифункциональной активностью, а различие в структурах определялось тем, что в KL-локусе K70 имеются гены биосинтеза DFucpNAc. Кроме того, выяснилось, что деполимеразы фагов AM24, BS46 и APK09 (как предполагалось, специфичные для К9), также могут расщеплять два типа связей - βDFucpNAc(1-4)αDGalpNAc (в к70) и βDGlcpNAc(1-4)αDGalpNAcA (в К9). 2) Acinetobacter baumannii K3-v1 (изолят AB5001). Структура капсульного полисахарида K3-v1 была установлена и в его составе, кроме обычных моносахаридов, была обнаружена нестехиометрически O-ацетилированная по положению (4) 2,3-диацетамидо-2,3-дезокси-D-глюкуроновая кислота (D-GlcNAc3NAcA) в боковой цепи: -3)[bDGlcNAc3NAcA4OAc(1-4)]aDGalp-(1-6)bDGlcp(1-3)bDGalpNAc-(1- КПС A. baumannii K3-v1 был структурно схож с ранее установленным КПС A. baumannii K3, имеющим пентасахаридное повторяющееся звено: -3)[bDGlcNAc(1-6)][bDGlcNAc3NAcA4OAc(1-4)]aDGalp-(1-6)bDGlcp(1-3)bDGalpNAc-(1- Отличие заключалось в отсутствии в КПС K3-v1 бокового остатка bDGlcNAc, что связано с делецией гена Gtr6 в кластере биосинтеза K3-v1, ответственного за перенос бокового остатка D-GlcpNAc в K3. 3) Acinetobacter baumannii K135 (изолят RES-546). Особенностью КПС многих типов A. baumannii является присутствие изомеров 5,7 диамино-3,5,7,9-тетрадезоксинон-2-улозоновой кислоты. Три из них – ацинетаминовая кислота (L глицеро-L-альтро-изомер), 8-эпиацинетаминовая кислота (D глицеро-L-альтро-изомер) и 8 эпипсевдаминовая кислота (D-глицеро-L-манно-изомер) – в природных углеводах других видов бактерий до настоящего времени не обнаружены. В ходе выполнения данного этапа проекта, мы полностью аннотировали генный кластер биосинтеза штамма RES-546, который соответствовал установленной химической структуре повторяющегося звена КПС, включая первый инициирующий моносахарид: [8ePse5Ac7Ac-(2-6)aGal](-3)aDGlcpNAc(1-3)bDGlcpNAc-(1- Структура была подтверждена также расщеплением по Смиту и была выделена отдельная основная цепь и гликозид b-8ePse5Ac7Ac-(2-1)-Gro. Гликозид с незамещенной 8ePse5Ac7Ac помог точно подтвердить абсолютную конфигурацию высшего сахара. Гена ответственного за биосинтез эпимеразы, способной на конверсию Pse5Ac7Ac в 8ePse5Ac7Ac на данном этапе выявить не удалось. Вероятно, он находится в хромосоме вне кластера. 4) Фаговые деполимеразы семейства Friunavirus и их специфичность к гликозидным связям В данной части нашей работы были подробно изучены гликозидазы хвостовых шипов фриуновирусов APK09, APK14, APK16, APK86, APK127v, APK128 и APK37.1. Гены гликозидазы были экспрессированы в плазмиде в векторах на основе Escherichia coli B834, синтезированные белки были очищены и использованы для обработки КПС штаммов K9, K14, K16, K37/K3-v1, K86, K127 и K128. Все полученные олигосахариды (мономеры, димеры и тримеры повторяющихся звеньев КПС) были выделены и охарактеризованы, также были установлены гликозидные связи, по которым шло расщепление, а именно: b-D-GlcpNAc-(1-3)-а-D-GalpNAcA (К9, фаг APK09) a-D-GalpNAc-(1-4)-b-D-GalpNAc (K14, фаг APK14) b-D-Galp-(1-3)-b-D-GalpNAc (K16, фаг APK16) b-D-GalpNAc-(1-3)-a-D-Galp (K37б фаг APK37.1) b-D-GalpNAc-(1-3)-a-D-Galp (K3-v1, фаг K3-v1) b-D-GalpNAc-(1-3)-a-L-Rhap (K86, фаг APK86) b-D-GalpNAc-(1-3)-a-D-Galp (K127, фаг APK127v) b-D-GalpNAc-(1-4)-a-D-Galp (K128, фаг APK128) Высочайшая специфичность фаговых деполимераз открывает широкие перспективы, например, для синтеза гликонъюгатов но основе олигосахаридов КПС и нейтрального белка-носителя, которые можно использовать в качестве вакцинных препаратов. Полученные на этапе 2023 года данные были представлены нами в пяти статьях, включая обзор, с упоминанием о поддержке Фонда РНФ.

 

Публикации

1. Касимова А.А., Шарар Н.С., Амброуз С.Дж., Книрель Ю.А., Шнейдер М.М., Тимошина О.Ю., Попова А.В., Перепелов А.В., Дмитренок А.С., Сюй Л.Ю., Холл Р.М., Кеньон Дж.Дж. The Acinetobacter baumannii K70 and K9 capsular polysaccharides consist of related K-units linked by the same Wzy polymerase and cleaved by the same phage depolymerases Microbiology spectrum, e0302523 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.1128/spectrum.03025-23

2. Тимошина О.Ю., Касимова А.А., Шнейдер М.М., Арбатский Н.П., Шашков А.С., Шеленков А.А., Михайлова Ю.В., Попова А.В., Холл Р.М., Книрел Ю.А., Кеньон Дж.Дж. Loss of a Branch Sugar in the Acinetobacter baumannii K3-Type Capsular Polysaccharide Due To Frameshifts in the gtr6 Glycosyltransferase Gene Leads To Susceptibility To Phage APK37.1 Microbiology spectrum, 11(1):e0363122 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.1128/spectrum.03631-22

3. Тимошина О.Ю., Касимова А.А., Шнейдер М.М., Матюта И.О., Николаева А.Ю., Евсеев П,В., Арбатский Н.П., Шашков А.С., Чижов А.О., Шеленков А.А., Михайлова Ю.В., Слюкин П.В., Воложанцев Н.В., Бойко К.М., Книрель Ю.А. , Мирошников К.А. , Попова А.В. Friunavirus Phage-Encoded Depolymerases Specific to Different Capsular Types of Acinetobacter baumannii International Journal of Molecular Sciences, 24(10):9100 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.3390/ijms24109100

4. Шашков А.С., Касимова А.А., Арбатский Н.П., Сенченкова С.Н., Перепелов А.В., Дмитренок А.С., Чижов А.О., Книрель Ю.А., Шнайдер М.М., Попова А.В., Кеньон Дж.Дж. Complete chemical structure of the K135 capsular polysaccharide produced by Acinetobacter baumannii RES-546 that contains 5,7-di-N-acetyl-8-epipseudaminic acid Carbohydrate Research, V. 523, 108726 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.1016/j.carres.2022.108726

5. Книрель Ю. А., Касимова А. А., Арбатский Н. П., Шнейдер М. М., Попова А. В., Бровко Ф. А., Шашков А. С., Сенченкова С. Н., Перепелов А. В., Шпирт А. М. 5,7-Diamino-3,5,7,9-tetradeoxynon-2-ulosonic Acids in the Capsular Polysaccharides of Acinetobacter baumannii Biochemistry, Moscow, 88(2):202-210 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.1134/S0006297923020049


Возможность практического использования результатов
Как нами показано, иммунопрепараты на основе продуктов расщепления КПС обладают пролонгированной протективной активностью и могут быть востребованы для создания практически применимых эффективных вакцин против инфекционных заболеваний, вызываемых A. baumannii (в частности, штамма К9). Это отражено, например, в нашей публикации - Руденко Н., Каратовская А., Замятина А., Шепеляковская А., Семушина С., Бровко Ф., Шпирт А., Торгов В., Колотыркина Н., Зинин А., Касимова А., Перепелов А., Шнейдер М., Книрель Ю. (N. Rudenko, A. Karatovskaya, A. Zamyatina, A. Shepelyakovskaya, S. Semushina, F. Brovko, A. Shpirt, V. Torgov, N. Kolotyrkina, A. Zinin, A. Kasimova, A. Perepelov, M. Shneider, Y. Knirel) Immune Response to Conjugates of Fragments of the Type K9 Capsular Polysaccharide of Acinetobacter baumannii with Carrier Proteins Microbiology spectrum 26;10(5):e0167422 https://doi.org/10.1128/spectrum.01674-22 (2022). Q1 Таким образом, продемонстрирована эффективность антител к гликоконъюгатам против острой ацинетобактерной инфекции у млекопитающих. Реальные клинические испытания подобных препаратов для людей возможны, но это требует дополнительных исследований и разрешения соответствующих государственных органов (Минздрав, Роспотребнадзор и т.д.).