КАРТОЧКА ПРОЕКТА ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ И ПОИСКОВЫХ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ,
ПОДДЕРЖАННОГО РОССИЙСКИМ НАУЧНЫМ ФОНДОМ

Информация подготовлена на основании данных из Информационно-аналитической системы РНФ, содержательная часть представлена в авторской редакции. Все права принадлежат авторам, использование или перепечатка материалов допустима только с предварительного согласия авторов.

 

ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ


Номер 21-74-20077

НазваниеИспользование нейтрофилов для повышения эффективности доставки противоопухолевых нанопрепаратов.

РуководительГаранина Анастасия Сергеевна, Кандидат биологических наук

Организация финансирования, регион Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский технологический университет "МИСИС", г Москва

Период выполнения при поддержке РНФ 2021 г. - 2024 г. 

Конкурс№51 - Конкурс 2021 года по мероприятию «Проведение исследований на базе существующей научной инфраструктуры мирового уровня» Президентской программы исследовательских проектов, реализуемых ведущими учеными, в том числе молодыми учеными.

Объект инфраструктуры Центр коллективного пользования «Медицинские и биотехнологические нанотехнологии».

Область знания, основной код классификатора 04 - Биология и науки о жизни, 04-205 - Клеточная биология, цитология, гистология

Ключевые словаНейтрофилы, опухоль, наночастицы, липосомы, доставка препаратов, микроутечки, клеточные векторы, интравитальная микроскопия, эндоцитоз, нейтрофильные внеклеточные ловушки, комбинированная терапия

Код ГРНТИ34.19.00


 

ИНФОРМАЦИЯ ИЗ ЗАЯВКИ


Аннотация
Лечение онкологических заболеваний остается одной из главных нерешенных задач современной медицины. Большие надежды исследователи и клиницисты связывают с использованием противоопухолевых препаратов, доставляемых с помощью наночастиц (НЧ). На протяжении последних 30 лет концепция пассивной доставки нанопрепаратов за счет повышенной проницаемости аномальных опухолевых сосудов определяла вектор развития наноносителей в онкологии. Однако неоднократные провалы нанопрепаратов в клинических испытаниях заставили сообщество исследователей пересмотреть точку зрения об эффективности их пассивной доставки. В связи с этим в последние годы получили развитие новые концепции доставки препаратов, среди которых – использование клеточных векторов. Предложено использование нейтрофилов, моноцитов/макрофагов, Т-лимфоцитов, а также стволовых клеток для активной доставки нанопрепаратов к опухоли. Однако недостаточное понимание механизмов взаимодействия НЧ с клетками-носителями, а также факторов, определяющих эффективность адресной доставки препаратов, тормозит развитие новых стратегий борьбы со злокачественными новообразованиями. Основная идея проекта – использование нейтрофилов для повышения эффективности противоопухолевой терапии с использованием нанопрепаратов. В рамках работы над проектом планируется решить три основные задачи: 1. изучить механизмы взаимодействия НЧ различного состава и химической природы с нейтрофилами; 2. изучить механизмы доставки НЧ в опухоль, связанные с нейтрофилами; 3. оценить терапевтическую эффективность нейтрофил-ассоциированных путей доставки нанопрепаратов к опухоли на животных моделях. В работе будет использовано несколько типов НЧ и опухолевых моделей, а решение каждой из поставленных задач планируется осуществлять с применением различных современных методов исследования – интравитальной микроскопии (ИВМ), проточной цитометрии, электронной микроскопии, микроскопии сверхвысокого разрешения, IVIS и др. Впервые будет проведен количественный анализ и оценен вклад двух различных нейтрофил-ассоциированных механизмов доставки НЧ в опухоль – переноса на нейтрофиле и утечки вслед за нейтрофилом, выходящим в ткань. Также оценка терапевтической эффективности нейтрофил-ассоциированных путей доставки препаратов будет впервые проводиться с использованием комплекса клинически релевантных моделей (адъювантная терапия после резекции опухоли и после применения гипертермии; терапия опухолей с высоким содержанием нейтрофилов). Решение указанных задач позволит разработать новые способы борьбы с онкопатологией, основанные на биологических свойствах нейтрофилов.

Ожидаемые результаты
1. Изучение факторов, влияющих на захват НЧ нейтрофилами, позволит целенаправленно моделировать НЧ с физико-химическими свойствами, оптимальными для доставки на клеточных носителях. 2. Сравнительный анализ пассивного и клеточно-опосредованного транспорта НЧ методом ИВМ позволит оценить потенциал нейтрофилов в повышении эффективности доставки препаратов в опухоль. 3. Будет подробно изучен недавно открытый нами механизм доставки липосом, связанный с образованием утечки в локусе экстравазации нейтрофила. 4. Будут впервые предложены и протестированы на животных моделях схемы лечения злокачественных новообразований нанопрепаратами, основанные на биологических особенностях нейтрофилов. Результаты данных экспериментов могут стать основой для дальнейшего развития подходов к терапии онкозаболеваний с использованием нейтрофилов.


 

ОТЧЁТНЫЕ МАТЕРИАЛЫ


Аннотация результатов, полученных в 2021 году
В ходе первого года выполнения проекта были получены следующие научные результаты: 1. с помощью проточной цитометрии и интравитальной микроскопии установлено, что среди субпопуляций лейкоцитов крови лабораторных мышей с подкожно привитой опухолью 4Т1 наиболее перспективными в роли векторов доставки различных типов наночастиц (НЧ), отличающихся по своим физико-химическим свойствам, к опухоли являются нейтрофилы. Это обусловлено количественным преобладанием данных клеток в опухолевом микроокружении и в крови животных наряду со способностью взаимодействовать с НЧ и обеспечивать их выход из кровеносного русла. При этом нейтрофилы могут переносить НЧ как непосредственно на своей поверхности, так и провоцировать выход НЧ за счет формирования микро- и макроутечек; 2. с помощью трансмиссионной электронной микроскопии и лазерной сканирующей конфокальной микроскопии показано, что НЧ могут располагаться как в цитоплазме нейтрофилов, так и внутри вакуолей, не являющихся ранними или поздними эндосомами (предположительно, в эндолизосомах или фагосомах); 3. с помощью конфокальной микроскопии выявлено, что при инкубации нейтрофилов, выделенных из крови мышей с подкожно привитой опухолью, с различными типами НЧ происходит постепенное накопление последних внутри клеток, а насыщение нейтрофилов наночастицами достигается за 1 час совместного культивирования; 4. в ходе проведения экспериментов обнаружено, что важную роль в процессах взаимодействия выделенных нейтрофилов с НЧ играет состав культуральной среды, а именно присутствие или отсутствие в ней плазмы крови; 5. с помощью различных ингибиторов эндоцитоза установлено, что молекулярные механизмы, отвечающие за захват НЧ in vitro, могут отличаться в зависимости от конкретного типа НЧ и условий культивирования. Так, магнитные НЧ как в присутствии, так и в отсутствие плазмы захватываются нейтрофилами за счет клатрин-опосредованного, кавеолин-зависимого эндоцитоза и макропиноцитоза. В основе эндоцитоза липосом в присутствии плазмы, а также PLGA НЧ как при инкубации с плазмой, так и без нее лежат механизмы, зависящие от клатрина, кавеолина/рафтов, а также фагоцитоз. Липосомы в отсутствие плазмы захватываются нейтрофилами за счет макропиноцитоза; 6. с помощью ЛДГ-теста показано, что ни один тип НЧ, используемых в работе, не оказывает токсического влияния на нейтрофилы, выделенные из крови мышей. Выживаемость клеток, инкубировавшихся в присутствии НЧ, составляет 100 %; 7. с помощью конфокальной микроскопии выявлено, что при захвате НЧ нейтрофилами, выделенными из крови мышей, отсутствует выраженное усиление продукции активных форм кислорода (АФК) клетками. Исключение составляют лишь липосомы в условиях, когда нейтрофилы инкубировались с ними в присутствии плазмы. При этом было отмечено наличие существенного усиления генерации АФК нейтрофилами; 8. с помощью проточной цитометрии установлено, что после внутривенного введения НЧ мышам с подкожно привитой опухолью происходит увеличение продукции АФК нейтрофилами, захватившими исследуемые типы НЧ. Однако данное увеличение несущественно. Это, в свою очередь, свидетельствует об отсутствии активации нейтрофилов наночастицами; 9. с помощью проточной цитометрии выявлено усиление экспрессии поверхностного маркера CD11b нейтрофилами, захватившими НЧ вследствие их внутривенного введения мышам. Однако данное усиление так же несущественно и свидетельствует об отсутствии активации нейтрофилов наночастицами; 10. с помощью конфокальной микроскопии показано, что при взаимодействии нейтрофилов с различными типами НЧ, используемых в работе, в условиях in vitro формирование NETs наблюдается лишь у незначительной части клеток; 11. обнаружены различия в поведении трех типов НЧ, отличающихся по своим физико-химическим свойствам, в кровотоке после их внутривенного введения лабораторным животным, а также в механизмах эндоцитоза данных НЧ выделенными нейтрофилами.

 

Публикации


Аннотация результатов, полученных в 2022 году
В ходе второго года выполнения проекта были выполнены работы и получены следующие научные результаты: 1. было установлено, что в условиях суспензионного состояния нейтрофилов, выделенных из крови животных с подкожно привитой опухолью 4Т1, присутствие плазмы в среде кудьтивирования влияет как на взаимодействие PLGA-Cy5 с нейтрофилами, так и на их захват клетками, снижая оба этих показателя. Отсутствие в плазме IgG/IgM существенно увеличивает неспецифическое взаимодействие нейтрофилов с НЧ. Взаимодействие и захват НЧ нейтрофилами не опосредованы рецепторами к С3а и С5а компонентам системы комплемента и крайне мало зависят от скавенджер-рецепторов; 2. выявлено, что в условиях прикрепленного состояния нейтрофилов, выделенных из крови животных с подкожно привитой опухолью 4Т1, присутствие плазмы в среде кудьтивирования приводит к увеличению как взаимодействия, так и захвата НЧ нейтрофилами. Ингибирование рецепторов к С3а и С5а компонентам системы комплемента, а также скавенджер-рецепторов не влияет на захват PLGA-Cy5 нейтрофилами. Отсутствие IgG/IgM и блокирование рецепторов к IgG приводит к незначительному снижению захвата НЧ. 3. с помощью теста миграции нейтрофилов in vitro было показано, что клетки сохраняют способность мигрировать через слой эндотелиальных клеток после взаимодействия с липосомами; 4. на модели миграции нейтрофилов in vitro с использованием трансвеллов было установлено, что липосомы способны проникать через слой эндотелиальных клеток как пассивно, так и за счет мигрирующих нейтрофилов, при этом, нейтрофил-ассоциированный транспорт НЧ является более эффективным, чем пассивный; 5. методом интравитальной микроскопии было показано, что внутривенное введение НЧ не оказывает существенного влияния на поведение нейтрофилов. При этом, МНЧ-ЧСА-Су5 и PLGA-Cy5 могут захватываться нейтрофилами и транспортироваться ими через стенку сосуда в ткань опухоли. Липосомы-DiD не захватываются нейтрофилами, однако последние способствуют формированию микро- и макроутечек данного типа НЧ из сосудов; 6. методом интравитальной микроскопии было установлено, что частота переноса МНЧ-ЧСА-Су5 через стенку сосуда с помощью нейтрофилов составляет 19 % случаев, PLGA-Cy5 – 15 %. Формирование макроутечек липосом-DiD наблюдается в 3 % случаев, а микроутечек – в 53 %; 7. с помощью интравитальной микроскопии было выявлено, что вклад активного транспорта МНЧ-ЧСА-Су5 через стенку сосудов крайне невелик, данные НЧ выходят из опухолевых сосудов преимущественно благодаря пассивному транспорту. Активный перенос PLGA-Cy5 нейтрофилами также не является основным способом транспорта данных НЧ через стенку сосудов. Наиболее ощутимый вклад нейтрофилы вносят в доставку липосом-DiD; 8. методом интравитальной микроскопии было показано, что при одновременном введении липосом-DiD и МНЧ-ЧСА-Су3 локусы спонтанных утечек МНЧ-ЧСА-Су3 и микроутечек липосом-DiD, опосредованных нейтрофилами, не связаны друг с другом; 9. методом интравитальной микроскопии было установлено, что NETs не являются механизмом захвата НЧ; 10. с помощью интравитальной микроскопии было выявлено, что контакт НЧ с нейтрофилами не вызывает формирование NETs in vivo.

 

Публикации

1. Гаранина А.С., Ефремова М.В., Мачулкин А.Э., Любин Е.В., Воробьева Н.С., Жиронкина О.А., Стрелкова О.С., Киреев И.И., Алиева И.Б., Узбеков Р.Э., Агафонов В.Н., Щетинин И.В., Федянин А.А. и др. Bifunctional Magnetite–Gold Nanoparticles for Magneto-Mechanical Actuation and Cancer Cell Destruction Magnetochemistry, V. 8(12), p. 185 (год публикации - 2022) https://doi.org/10.3390/magnetochemistry8120185

2. Гаранина А.С., Никитин А.А., Абакумова Т.О., Семкина А.С., Преловская А.О., Науменко В.А., Ерофеев А.С., Горелкин П.В., Мажуга А.Г., Абакумов М.А., Виедвальд У. Cobalt Ferrite Nanoparticles for Tumor Therapy: Effective Heating versus Possible Toxicity Nanomaterials (Basel), V. 12(1), pp. 38 (год публикации - 2021) https://doi.org/10.3390/nano12010038


Аннотация результатов, полученных в 2023 году
В ходе третьего года выполнения проекта были выполнены работы и получены следующие научные результаты: 1. методом интравитальной микроскопии показано, что долгосрочная деплеция нейтрофилов не оказывает выраженного воздействия на частоту формирования локусов скопления PLGA-Cy5 НЧ и микроутечек липосом-DiD в микроокружении опухоли 4Т1; 2. методом IVIS установлено, что в результате деплеции нейтрофилов снижается эффективность накопления как PLGA-Cy5 НЧ, так и липосом-DiD в опухоли 4Т1. При этом, для НЧ PLGA-Cy5 вклад нейтрофилов менее значимый, чем для липосом-DiD; 3. методом интравитальной микроскопии на фоне мобилизации нейтрофилов подтверждено, что вклад нейтрофилов в формирование локусов скопления НЧ PLGA-Cy5 невелик (вне зависимости от исследуемой опухолевой модели); 4. с помощью метода проточной цитометрии доказана эффективность долгосрочной деплеции нейтрофилов вплоть до 4-ого дня с момента введения антител; 5. выявлено, что нейтрофилы могут вносить вклад в эффективность доставки лекарственных препаратов на основе НЧ, а именно липосомальной формы доксорубицина – Келикса, в опухоль, хоть он и не ярко выражен; 6. показано, что однократная инъекция Келикса обладает меньшей эффективностью по сравнению с его двукратным введением, в связи с чем для последующих экспериментов принято решение проводить комбинированную терапию с двукратным введением Келикса (и деплецирующих антител накануне).

 

Публикации

1. Гаранина А.С., Вишневский Д.А., Чернышева А.А., Валихов М.П., Малиновская Ю.А., Лазарева П.А., Семкина А.С., Абакумов М.А., Науменко В.А. Neutrophil as a Carrier for Cancer Nanotherapeutics: A Comparative Study of Liposome, PLGA, and Magnetic Nanoparticles Delivery to Tumors Pharmaceuticals, Volume 16, № 11, p. 1564-1585 (год публикации - 2023) https://doi.org/10.3390/ph16111564