КАРТОЧКА ПРОЕКТА ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ И ПОИСКОВЫХ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ,
ПОДДЕРЖАННОГО РОССИЙСКИМ НАУЧНЫМ ФОНДОМ

Информация подготовлена на основании данных из Информационно-аналитической системы РНФ, содержательная часть представлена в авторской редакции. Все права принадлежат авторам, использование или перепечатка материалов допустима только с предварительного согласия авторов.

 

ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ


Номер 18-73-10105

НазваниеРазработка новых молекулярных инструментов ферментативного и флуорогенного флуоресцентного мечения для прижизненной визуализации в живых системах.

РуководительБаранов Михаил Сергеевич, Кандидат химических наук

Организация финансирования, регион Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук, г Москва

Период выполнения при поддержке РНФ 07.2018 - 06.2021  , продлен на 07.2021 - 06.2023. Карточка проекта продления (ссылка)

Конкурс№30 - Конкурс 2018 года по мероприятию «Проведение исследований научными группами под руководством молодых ученых» Президентской программы исследовательских проектов, реализуемых ведущими учеными, в том числе молодыми учеными.

Область знания, основной код классификатора 03 - Химия и науки о материалах, 03-103 - Синтез, строение и свойства природных и физиологически активных веществ; медицинская химия и прогнозирование различных видов биоактивности

Ключевые словаФлуоресценция, флуоресцентные красители, флуорогенные красители, флуороген-активирующие белки, гетероциклические соединения, системы мечения, флуоресцентная микроскопия, имидазолоны, GFP, Y-FAST, NanoLuc, липоевая кислота, лигаза, перекись водорода, сольватохромизм.

Код ГРНТИ31.21.27


СтатусУспешно завершен


 

ИНФОРМАЦИЯ ИЗ ЗАЯВКИ


Аннотация
Технологии современной флуоресцентной микроскопии позволили достичь беспрецедентного уровня понимания многих биологических процессов и вошли в арсенал ключевых инструментов современной биологии и молекулярной медицины. Использование подобных технологий невозможно без введения в исследуемые объекты различных меток, в роли которых могут выступать флуоресцентные белки, а также синтетические флуорофоры. К сожалению, все существующие подходы не лишены недостатков, поэтому создание новых эффективных методов флуоресцентного мечения живых систем является актуальной и важной задачей. В связи с этим, целью настоящего исследования является разработка новых молекулярных инструментов визуализации процессов, протекающих в живых системах. В рамках поставленной цели в проекте планируется реализовать три ключевых направления: 1) Расширение палитры красителей, пригодных для использования в системе флуоресцентного мечения с использованием мутантных форм лигазы липоевой кислоты. В природе эта лигаза катализирует ковалентное связывание липоевой кислоты с определенным пептидным фрагментом. Синтетические мутанты этого фермента могут аналогичным образом катализировать реакцию с флуоресцентными красителями, что может быть использовано для пострансляционного мечения белков, если в них добавлена нужная последовательность аминокислот. К сожалению, на данный момент создано лишь две мутантные формы этой лигазы, которые позволяют вводить синюю и красную флуоресцентные метки. В нашей работе мы планируем расширить этот набор за счет создания новых красителей с похожей структурой и тестирования их против масштабной библиотеки мутантных форм лигазы с измененным сусбтрат-связывающим «карманом». 2) Создание новых пар флуороген/флуороген-активирующий белок на основе хромофоров флуоресцентных белков и белков NanoLuc и Y-FAST. Помимо традиционных подходов к мечению, в которых используются объекты, имеющие постоянную флуоресценцию, недавно был разработан ряд методов основанных на использовании веществ–флуорогенов, которые не имеют выраженной флуоресценции сами по себе, однако приобретают ее при связывании с целевыми белками. Одной из перспективных групп веществ-флуорогенов являются производные хромофоров флуоресцентных белков, характеризующиеся колоссальным химическим разнообразием и широчайшей палитрой цветов. В настоящем проекте мы планируем протестировать возможность активации флуоресценции этих веществ белками NanoLuc и Y-FAST, чьи субстраты имеют очень похожее строение. Использование комбинаторной библиотеки веществ и проведение нескольких итерационных шагов тестирование-анализ-синтез-тестирование позволят добиться нужного результата. 3) Создание новых специфических низкомолекулярных сенсоров, обладающих выраженной флуорогенностью. Третьей частью настоящего проекта станет создание генетически не кодируемых меток. В роли подобных меток чаще всего используются различные сенсоры – флуорофоры, в структуре которых содержится группа чувствительная к определнному аналиту. Основной проблемой, которая возникает при использовании подобных веществ, является нецелевое мечение и наличие фонового сигнала. В настоящей работе мы предлагаем видоизменить этот подход и использовать в роли сенсоров вещетсва с выраженной флуорогенностью – упомянутые производные хромофоров флуоресцентных белков. Такие сенсоры не будут флуоресцентны в воде, а будут флуоресцировать лишь в менее полярных средах. Подобное свойство не позволит наблюдать мгновенного отклика на появление аналитов в водной среде, однако позволит избежать размывания и позволит детектировать аналиты в мембранах. Более того, эти вещества смогут стать отличными красителями, селективными в отношении отдельных органелл клеток, богатых определенными аналитами (окислителями, кислотами, тиолами и т.п.), так как накопление флуоресцентного сигнала будет происходить строго в мембранах подобных органелл. Таким образом, реализация настоящего проекта позволит предложить новые подходы к визуализации процессов, протекающих в живых системах, с помощью генетически кодируемых и некодируемых технологий флуоресцентного мечения с использованием новых флуоресцентных и флуорогенных соединений. Подобные результаты позволят достигнуть прорыва в решении задач многоцветного флуоресцентного мечения, а также визуализации быстродеградирующих белков и других актуальных направлениях, что является важной задачей, не только в фундаментальном, но и в прикладном плане.

Ожидаемые результаты
В результате выполнения настоящего проекта будет создан ряд новых инструментов визуализации и исследования процессов, протекающих в живых системах. В результате выполнения проекта будет: 1) Расширен круг флуоресцентных сенсоров и красителей, пригодных для использования в системе флуоресцентного мечения с использованием мутантных форм лигазы липоевой кислоты. 2) Создан набор новых пар флуороген/флуороген-активирующий белок на основе хромофоров флуоресцентных белков, а также белков NanoLuc и Y-FAST или их мутантных форм. 3) Создан набор новых специфических низкомолекулярных сенсоров, обладающих выраженной флуорогенностью. Таким образом, реализация настоящего проекта позволит создать новые подходы к визуализации процессов в живых системах, с помощью генетически кодируемых и не кодируемых технологий флуоресцентного мечения с использованием новых флуоресцентных и флуорогенных соединений. Разработанные подходы позволят достигнуть прорыва в решении задач многоцветного флуоресцентного мечения, а также визуализации быстродеградирующих белков и других актуальных направлениях, что является важной задачей, не только в фундаментальном, но и в прикладном плане.


 

ОТЧЁТНЫЕ МАТЕРИАЛЫ


Аннотация результатов, полученных в 2018 году
Поскольку настоящий проект предполагает работу по трем независимым направлениям, результаты выполнения проекта на первом году также приведены отдельно по каждому из них. Направление 1. «Расширение палитры красителей, пригодных для использования в системе флуоресцентного мечения, с использованием мутантных форм лигазы липоевой кислоты». Было выбрано семь аминокислотных остатков в последовательности липоат-лигазы (LplA) дикого типа, формирующих субстрат-связывающий “карман” фермента. Была создана и верифицирована библиотека мутантных форм LplA с заменами этих семи аминокислотных остатков, образующих «карман», связывающий субстраты по принципу «все на все». Создано четыре новых возможных субстрата (в количестве по 500 мг каждого) и наработано достаточное количество субстратов сравнения (кумаринового и резоруфинового, в количестве по ~500 мг каждого). Изучены оптические свойства новых веществ. Все полученные субстраты переведены в защищенную (ацетоксиметилированную) форму. На полученной выборке веществ и описанных в литературе мутантных формах LplA отработана система in vitro тестирования. Начата работа по синтезу расширенной группы субстратов. Результат исследования возможности введения линкерного заместителя в различные красители опубликован в журнале Tetrahedron Letters. Направление 2. «Создание новых пар флуороген/флуороген-активирующий белок на основе хромофоров флуоресцентных белков и белков NanoLuc и Y-FAST». Проведено первичное тестирование библиотеки потенциальных флуорогенов на белках Y-FAST и NanoLuc, иммобилизованных на аффинном сорбенте. Всего в тестировании было использовано 64 вещества из имеющейся библиотеки. Был проведен анализ полученных данных и показано, что ряд соединений из библиотеки проявляет значимое увеличение флуоресценции при взаимодействии с белком Y-FAST, но ни один из них не дает разгорания с белком NanoLuc. Структура соединений проявляющих разгорание с белком Y-FAST проанализирована, в результате чего сделаны выводы о наличие закономерностей между активностью и строением субстратов. На основе этих выводов предложены и синтезированы новые флуорогены для белка Y-FAST в количестве 30 штук. Для белка NanoLuc создано 24 новых потенциальных флуорогена имеющих структуру близкую структуре оригинального люциферина. Для всех новых соединений изучены оптические свойства. Новая партия флуорогенов также протестирована на белках, иммобилизованных на аффинном сорбенте. В результате выявлена еще большая группа веществ потенциальных флуорогенов для белка Y-FAST, а флуорогенов для белка NanoLuc по-прежнему не найдено. Все выявленные вещества, демонстрирующие высокую флуорогенность в отношении белка Y-FAST дополнительно изучены на «пустых» клеточных культурах, не экспрессирующих белок, что позволило отбросить соединения, демонстрирующие нецелевое окрашивание и окончательно сформировать круг потенциальных флуорогенов для более подробного изучения на втором году. Выводы о взаимосвязи между строением и оптическими свойствами различных производных хромофоров флуоресцентных белков, полученные в ходе работ по данному направлению опубликованы в журнале Chemical Сommunications. Направление 3. «Создание новых специфических низкомолекулярных сенсоров, обладающих выраженной флуорогенностью». Проведен синтез набора соединений, являющихся потенциальными флуоресцентными сенсорами с выраженной флуорогенностью, а именно создан набор потенциальных «сенсоров полярности» (два десятка веществ) и набор веществ, необратимо реагирующих с различными аналитами (6 штук). Изучены оптические свойства всех созданных веществ. Поведение полученных «сенсоров полярности» изучено на клеточных культурах, показано, что некоторые из них могут быть использован для селективного окрашивания клеточных органелл. Поведение веществ, реагирующих с аналитами изучено in vitro. Анализ полученных данных позволяет сделать выводы о взаимосвязи структура-свойства, предложить направления модификации созданных соединений и определить прочие перспективы и направления дальнейших исследований. В ходе работ выявлена серия веществ, которые могут быть использованы для селективного флуоресцентного окрашивания митохондрий или эндоплазматического ретикулума. Более подробное изучение этого феномена запланировано на второй год. Выводы о перспективности использования фотокислотных производных в роли сенсоров полярности, полученные в ходе работ по данному направлению опубликованы в журнале Journal of Phisical Chemistry B.

 

Публикации

1. Балеева Н.С., Зайцева С.О., Минеев К.С., Хаврошечкина А.В., Загудайлова М.Б., Баранов М.С. Enamine-azide [2+3]-cycloaddition as a method to introduce functional groups into fluorescent dyes Tetrahedron Letters, Том: 60 Выпуск: 5 Стр.: 456-459 (год публикации - 2019) https://doi.org/10.1016/j.tetlet.2019.01.007

2. Чен Ч., Баранов М.С., Зу Л., Балеева Н.С., Смирнов А.Ю., Зайцева С.О., Ямполский И.В., Солнцев К.М., Фанг Ч. Designing redder and brighter fluorophores by synergistic tuning of ground and excited states CHEMICAL COMMUNICATIONS, 2019,55, 2537-2540 (год публикации - 2019) https://doi.org/10.1039/c8cc10007a

3. Чен Ч., Зу Л., Баранов М.С., Танг Л., Балеева Н.С., Смирнов А.Ю., Ямпольский И.В., Солнцев К.М., Фанг Ч. Photoinduced Proton Transfer of GFP-Inspired Fluorescent Superphotoacids: Principles and Design The Journal of Physical Chemistry B, 123, 17, 3804-3821 (год публикации - 2019) https://doi.org/10.1021/acs.jpcb.9b03201


Аннотация результатов, полученных в 2019 году
Поскольку настоящий проект состоит из трех независимых частей, результаты выполнения проекта на втором году также приведены отдельно по каждой из них. Часть 1. «Расширение палитры красителей, пригодных для использования в системе флуоресцентного мечения, с использованием мутантных форм лигазы липоевой кислоты». Был проведен синтез потенциальных субстратов мутантных форм лигазы липоевой кислоты (всего более 25 веществ за два года). Были изучены свойства полученных веществ. Проведен отбор функциональных вариантов лигаз LplA из библиотеки репрезентативностью около 100 000 индивидуальных клонов на предмет переноса на полипептидный субстрат четырех флуорофоров. Было проведено два раунда отбора с подтвержденной степенью обогащения до 6 раз, что свидетельствует об эффективности проводимой селекции. Помимо отбора функциональных лигаз LplA, способных акцептировать новые функционализированные производные липоевой кислоты, из библиотеки ее мутантных форм был осуществлен поиск пар «мутантная форма LplA-субстрат» с помощью молекулярно-динамического моделирования. На 16500 сгенерированных мутантов получено 8746 уникальных последовательностей. На основе данных молекулярно-динамического моделирования были получены генетические конструкции, кодирующие пять самых «перспективных» вариантов Lpla методом последовательного сайт-специфического мутагенеза. Полученные данные свидетельствуют, что полученные липоат-лигазы с недостаточной эффективностью акцептируют в качестве субстрата новые производные липоевой кислоты. Наиболее разумное объяснение состоит в слишком сильном связывании исходного субстрата с лигазой, что мешает корректному удалению продукта в ходе модификации. В дальнейшем будет проведена оптимизации данного подхода для увеличения каталитической эффективности отбираемых вариантов лигазы LplA. Часть 2. «Создание новых пар флуороген/флуороген-активирующий белок на основе хромофоров флуоресцентных белков и белков NanoLuc и FAST». Для белка FAST. Исходя из результатов полученных на первом году выполнения проекта, был предложен набор новых перспективных флуорогенов. При этом основной упор был направлен на создание библиотеки веществ с максимальным разнообразием окраски, в том числе создании веществ, обладающих длинноволновыми положениями максимумов абсорбции и эмиссии. Был проведен синтез расширенной библиотеки веществ и скрининг их взаимодействия с белком. В результате был отобран набор кандидатов, демонстрирующих заметное разгорание. Все выявленные вещества, демонстрирующие высокую флуорогенность, были дополнительно изучены на «пустых» клеточных культурах, не экспрессирующих белок FAST. Также было проведено тестирование наиболее перспективных кандидатов на генно-инженерных конструкциях FAST. Предложенные пары были всесторонне изучены с использованием препаратов выделенных белков. Были определены константы связывания, положения максимумов эмиссии и абсорбции, квантовые выходы в свободном и связанном состоянии. В результате этих работ нами выявлена серия веществ, флуоресценция которых заметно увеличивается при взаимодействии с белком FAST, которые в паре с ним могут быть использованы для создании генетически-кодируемых меток. Созданный нами ряд характеризуется заметным цветовым разнообразием - максимумы эмиссии от 510 до 660 нм. Один из флуорогенов был изучен более подробно. Были окрашены более сложные генетически конструкции, изучен фотобличинг комплекса и доказана обратимость связывания. Результат опубликован в журнале Chemistry- A European Journal. Для белка NanoLuc. Исходя из результатов полученных на первом году выполнения проекта, нами был предложен набор новых потенциальных флуорогенов. Был проведен синтез нового набора веществ и скрининг их взаимодействия с белком. Вещества, демонстрирующие высокую флуорогенность, были дополнительно изучены на «пустых» клеточных культурах, не экспрессирующих белок. Предложенные пары были всесторонне изучены с использованием препаратов выделенных белков. Были определены константы связывания, положения максимумов эмиссии и абсорбции, квантовые выходы в свободном и связанном состоянии. В результате были найдены флуорогены, демонстрирующие умеренное разгорание с белком NanoLuc и выявлены взаимосвязи между строением и свойствами. Работы по поиску эффективных флуорогенов будут продолжен на третьем году. Часть 3. «Создание новых специфических низкомолекулярных сенсоров, обладающих выраженной флуорогенностью». Исходя из результатов первого года, был предложен и синтезирован расширенный круг флуорогенных веществ. Были изучены оптические свойства полученных веществ. Полученные «сенсоры полярности» были изучены на клеточных культурах, а поведение прочих веществ под действием аналитов было изучено in vitro. Анализ полученных данных позволил выявить наиболее перспективные кандидаты на роль новых сенсоров или предложить новые структуры для синтеза на третьем году. Вещества, продемонстрировавшие высокую селективность во флуоресцентном мечении, были более подробно изучены, в частности было проведено сравнение с существующими селективными красителями. Был выявлен один краситель пригодный для селективного и потенциал-независимого окрашивания митохондрий и два красителя селективных в отношении ЭПР. Показано, что предложенные сенсоры на аналиты из-за низкой чувствительности не могут быть использованы в живых системах. Результаты этого исследования были опубликованы в журнале Dyes and Pigments. Некоторые выводы о возможном использовании производных хромофора GFP в роли красителей чувствительных к окружающей среде за счет возможного переноса протона в возбужденном состоянии также были опубликованы в журнале Journal of chemical physics.

 

Публикации

1. Ермакова Ю.Г., Богданова Ю.А., Балеева Н.С., Зайцева С.О., Гугля Е.Б., Смирнов А.Ю., Загудайлова М.Б., Баранов М.С. Pyridine analogue of fluorescent protein chromophore: Fluorogenic dye suitable for mitochondria staining DYES AND PIGMENTS, 170, 107550 (год публикации - 2019) https://doi.org/10.1016/j.dyepig.2019.107550

2. Поварова Н.В., Зайцева С.О., Балеева Н.С., Смирнов А.Ю., Мяснянко И.В., Загудайлова М.Б., Божанова Н.Г., Горбачев Д.А., Малышевская К.А., Гавриков А.С., Мишин А.С., Баранов М.С. Red-Shifted Substrates for FAST Fluorogen-Activating Protein Based on the GFP-Like Chromophores CHEMISTRY-A EUROPEAN JOURNAL, Том: 25 Выпуск: 41 Стр.: 9592-9596 (год публикации - 2019) https://doi.org/10.1002/chem.201901151

3. Чен Ч, Зу Л, Болангер С.А., Балеева Н.С., Мяснянко И.Н., Баранов М.С., Фанг Ч. Ultrafast excited-state proton transfer dynamics in dihalogenated non-fluorescent and fluorescent GFP chromophores JOURNAL OF CHEMICAL PHYSICS, 12.2019 (год публикации - 2020) https://doi.org/10.1063/1.5138666


Аннотация результатов, полученных в 2020 году
Поскольку настоящий проект состоит из трех независимых частей, результаты выполнения проекта также приведены отдельно по каждой из них Часть 1. «Расширение палитры красителей, пригодных для использования в системе флуоресцентного мечения, с использованием мутантных форм лигазы липоевой кислоты». В связи с избыточной репрезентативностью ранее полученной библиотеки липоат-лигаз в ходе работ третьего года нами была de novo создана альтернативная библиотека, в которой замены аминокислот в субстратсвязывающем «кармане» производились только на три аминокислоты – аланин, валин и глицин. На данной библиотеке также был проведен отбор методом проточной цитометрии. Были отбораны дважды позитивные клетки, достоверно несущие как представителей библиотеки, так и полипептидный субстрат, содержащий последовательность LAP, ковалентно связанную с флуорофором. Два проведенных раунда селекции подтверждают правильность положений для замен, а также выбор аминокислотных остатков, так как количество положительных окрашенных клонов возрастает на порядок на каждом цикле. Таким образом, выявлены варианты липоат-лигазы, способные ковалентно присоединять синтетические флуорофоры к 13-членной аминокислотной последовательности-мишени. Однако дальнейшие исследования показали, что исследуемые лигазы имеют тенденцию к спонтанному захвату субстрата даже в отсутствии АТФ, а потому не могут быть использованы для эффективного ферментативного мечения, так как будут давать нецелевой сигнал ассоциированный с лигазами. Часть 2. «Создание новых пар флуороген/флуороген-активирующий белок на основе хромофоров флуоресцентных белков и белков NanoLuc и FAST». Для белка FAST: Создана серия флуорогенов для белка FAST, характеризующихся разнообразной окраской. Показано, что они могут быть использованы для генетически-кодируемого флуоресцентного мечения живых систем. Поиск флуорогенов осуществлен с помощью «химического мутагенеза», когда новые пары белок:флуороген выявляются не с помощью мутагенеза белка, а с помощью скринирования больших библиотек соединений. Предлагаемый нами подход позволяет использовать один и тот же белок для мечения самыми разными цветами. Созданная нами линейка веществ позволяет равноэффективно проводить мечение, подходящее для самых разных фильтров, при использовании одной и той же генетической конструкции. Предложенный нами пары могут быть использованы в самых разных исследованиях. Методом ЯМР впервые определена структура флуороген-активирующего белка FAST как свободном виде, так и в виде комплекса с лигандом. Определено строение кармана и ключевые взаимодействия, отвечающие за связывание. Обнаружено, что при связывании с лигандом происходит существенно изменение строение белка, а именно структуризация его N-концевой части. Опираясь на это знание, мы решили сократить белок FAST на 26 аминокислотных остатков, нашли подходящий лиганд и, таким образом, создали самую короткую генетически кодируемую флуороген активирующую метку – белок nanoFAST, содержащий всего 98 аминокислот и подходящий для флуоресцентной микроскопии. Данный результат может стать основой для прорыва в технологиях генетически-кодируемого флуоресцентного мечения. Показано, что для мечения с использованием FAST могут быть использованы и другие гетероциклы, нежели упомянутые ранее роданины и имидазолоны. Результат работ опубликован: Mineev K.S. et al NanoFAST: structure-based design of a small fluorogen-activating protein with only 98 amino acids // Chem. Sci., 2021, Advance Article Sokolov, A.I., Myasnyanko, I.N., Baleeva, N.S., Baranov M. S. Styrene Derivatives of Indole and Pyranone as Fluorogenic Substrates for FAST Protein. // Russ J Bioorg Chem, 2021, 47, 334–337 Для белка NanoLuc: Исходя из результатов, полученных на первых двух годах выполнения проекта, был предложен набор новых потенциальных флуорогенов, проведен их синтез и скрининг на выделенном белке. Выявлено несколько веществ, чья флуоресценция усиливается в 20-70 раз при взаимодействии с белком. Однако все созданные вещества демонстрировали заметное нецелевое окрашивание в живых клетках. Таким образом, созданные нами флуорогены не могут быть использованы в паре с белком nanoLuc для генетически-кодируемого флуоресцентного мечения, однако могут быть потенциально использованы для каких-то работ с этим белком in vitro. Часть 3. «Создание новых специфических низкомолекулярных сенсоров, обладающих выраженной флуорогенностью». Проведен синтез дополнительной библиотеки возможных «сенсоров полярности». Изучены оптические характеристики веществ. Проведено тестирование на клеточных культурах. Выявлено два вещества, дающих селективное окрашивание эндоплазматического ретикулума (ЭПР). Один из полученных красителей показал очень яркий и контрастный сигнал, сопоставимый по фотостабильности с флуоресцентными белками. Показано, что он может быть использован для окрашивания ЭПР в самых разных эукариотических клетках. Селективность окрашивания подтверждена с помощью эксперимента по совместной локализации с коммерчески доступным ER-трекером Red. Высочайшая фотостабильность сигнала, обусловленная постоянным обменом связанного и свободного красителя, говорит о высокой перспективности использования предложенного нами флуорогена. Таким образом, все заявленные работы по всем трем частям проекта выполнены в полном объеме, достигнуты значимые результаты, соответствующие заявленному плану работ, а также опубликованы статьи в научных журналах.

 

Публикации

1. А.И.Соколов, И.Н. Мяснянко, Н.С. Балеева, М.С. Баранов Styrene Derivatives of Indole and Pyranone as Fluorogenic Substrates for FAST Protein Russian Journal of Bioorganic Chemistry, Vol. 47, No. 1, pp. 316–319 (год публикации - 2021) https://doi.org/10.1134/S1068162021010234

2. Минеев К.С. и др. полный список авторов превышает допустимый размер поля NanoFAST: structure-based design of a small fluorogen-activating protein with only 98 amino acids CHEMICAL SCIENCE, - (год публикации - 2021) https://doi.org/10.1039/D1SC01454D


Возможность практического использования результатов
-