КАРТОЧКА ПРОЕКТА ФУНДАМЕНТАЛЬНЫХ И ПОИСКОВЫХ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ,
ПОДДЕРЖАННОГО РОССИЙСКИМ НАУЧНЫМ ФОНДОМ

Информация подготовлена на основании данных из Информационно-аналитической системы РНФ, содержательная часть представлена в авторской редакции. Все права принадлежат авторам, использование или перепечатка материалов допустима только с предварительного согласия авторов.

 

ОБЩИЕ СВЕДЕНИЯ


Номер 16-14-10009

НазваниеЭволюция некоторых групп позвоночных. Традиционная и молекулярная цитогенетика и древняя ДНК.

РуководительГрафодатский Александр Сергеевич, Доктор биологических наук

Организация финансирования, регион Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт молекулярной и клеточной биологии Сибирского отделения Российской академии наук, Новосибирская обл

Период выполнения при поддержке РНФ 2016 г. - 2018 г. 

Конкурс№13 - Конкурс 2016 года на получение грантов по приоритетному направлению деятельности РНФ «Проведение фундаментальных научных исследований и поисковых научных исследований отдельными научными группами».

Область знания, основной код классификатора 04 - Биология и науки о жизни, 04-104 - Общая генетика

Ключевые словагенетика животных, эволюция геномов, хромосомы, селекция, древняя ДНК, сравнительная геномика

Код ГРНТИ34.15.23


СтатусУспешно завершен


 

ИНФОРМАЦИЯ ИЗ ЗАЯВКИ


Аннотация
С самого начала развития генетики в России, с момента открытия в 1919 году одной из первых в мире кафедр генетики в Санкт-Петербургском университете профессором Ю.А Филипченко, исследования хромосом стало фирменным знаком российской биологии. Уже в двадцатые годы прошлого века, в условиях гражданской войны, по инициативе ассистента Филипченко и выдающегося в будущем эволюциониста Феодосия Григорьевича Добржанского (Th. Dobzhanky) были проведены экспедиции в Среднюю Азию и предприняты попытки описания хромосом яка, овец и двугорбого верблюда. Российская часть коллектива представляет собой третье и четвертое поколение школы Филипченко и Добржанского, прежде всего в хромосомных исследованиях. В 2006 г. была издана монография - ATLAS of Mammalian Chromosomes, 2006, John Wiley and Sons Publishers. Это издание должно было некоторым образом завершить 30-летний период развития цитогенетики млекопитающих и зафиксировать переход к следующему этапу, базирующемуся на методах молекулярной цитогенетики и геномики. Были отобраны наиболее высококачественные карты хромосом для 700 видов, полученных в ведущих лабораториях мира. Среди отобранных карт– 122, в том числе карты дифференциально-окрашенных хромосом большинства видов домашних и лабораторных животных, получены в нашей лаборатории. Это много больше, чем в любой другой лаборатории мира. Предполагалось, что представленные карты стали или станут основой для реализации полномасштабных геномных проектов для многих видов. Следующий этап развития сравнительной цитогенетики был связан с использованием сортированных хромосом в качестве молекулярных проб. Основным методом работы в этот период был сравнительный хромосомный пэйнтинг, или ZooFISH (Fengtang Yang, Alexander S. Graphodatsky Animal Probes and ZOO-FISH in T.Liehr (ed.) Fluorescence In Situ Hybridization (FISH) – Application Guide, Springer, 2009 P 323-347). Результаты этого многолетнего цикла исследований были суммированы в статьях: Malcolm A Ferguson-Smith, Vladimir Trifonov Mammalian Karyotype Evolution. Nature Rev. Genetics, 2007 Vol 8: 950-962; Alexander S. Graphodatsky, Vladimir A. Trifonov and Roscoe Stanyon The genome diversity and karyotype evolution of mammals Molecular Cytogenetics 2011, 4:22; и специальном выпуске журнала Cytogenenetics & Genome Research 2012;137:1-4), изданным позднее в виде книги (Stanyon, R.; Graphodatsky, A.(Ed’s) Evolutionary Dynamics of Mammalian Karyotypes, Karger, Basel, Switzerland, 2012, 208 pp). В цикле этих работ были определены районы гомологии (консервативные) хромосом у более чем 300 видов всех отрядов млекопитающих, обсуждены основные закономерности эволюционных изменений геномов на хромосомном уровне во всех основных таксонах. Вместе с тем, в ходе этих работ мы достаточно четко выяснили, что наши хромосомные пробы редко дают полную информацию о внутрихромосомных перестройках, таких как инверсии и смены позиций центромер. Получение данных о числе и локализации этих важнейших эволюционных перестроек представляется сейчас абсолютно актуальным. Можно было предполагать, что все эти проблемы будут решены по мере реализации геномных проектов. Однако, даже с появлением современных методов нового поколения (NGS), когда полное секвенирование геномов стало рутинной процедурой, сборка геномов остается огромной проблемой и в настоящее время практически никогда не доходит до привязки геномных данных к хромосомам. Так, последние около 100 реализованных проектов по секвенированию геномов видов позвоночных вообще не содержат каких-либо сведений о группах сцепления и хромосомах. Решению и этой абсолютно актуальной проблемы будет отчасти посвящен наш проект. Наша группа входит в консорциум по секвенированию геномов 10 тысяч видов позвоночных (Genome 10K) с момента его основания (Genome 10K Community of Scientists (David Haussler, Stephen J. O'Brien, … Alexander S. Graphodatsky, …Ya-Ping Zhang) A Proposal to Obtain Whole Genome Sequence for 10,000 Vertebrate Species The Journal of Heredity (2009);100(6):659-74.) и принимает участие как в выработке методических стандартов (Wong PBY, … Perelman P,… Murphy RW. Genome 10K community of scientists: Tissue sampling and standards for vertebrate genomics. GigaScience 1:8, 2012) так и реализации ряда проектов (Perelman P, ….Pecon-Slattery J. A molecular phylogeny of living primates. PLoS Genet 7(3): e1001342, 2011; G. Tamazian, … A. Makunin,… S. J. O’Brien, “Annotated features of domestic cat – Felis catus genome,” GigaScience, vol. 3, no. 1, p. 13, Aug. 2014.; Jarvis ED,... Perelman P,... Zhang G. Whole-genome analyses resolve early branches in the tree of life of modern birds. Science 346: 1320-1331, 2014). В настоящее время близки к завершению еще ряд международных проектов по секвенированию геномов (лисица, байкальская нерпа, серый кит, альпака), в которых мы принимаем участие с момента их ресурсного обеспечения, т.е. выбора животных, выделение качественной ДНК и обеспечиваем их завершение в плане привязки к хромосомам с помощью картирования на панелях радиационных гибридах клеток и картирования BAC-клонов. Ресурсы этих проектов, уже законченных, продолжающихся сейчас, либо планируемых к реализации в ближайшее время будут задействованы для изучения хромосомной и геномной эволюции в ряде интересных нам групп позвоночных, прежде всего млекопитающих. Основные методы – секвенирование нового поколения (NGS) и FISH на хромосомах, в том числе распластанных, огромного числа BAC клонов, содержащих интересующие нас участки геномов, прежде всего маркирующие круциальные эволюционные перестройки. Еще одним важным подходом проекта будет получение с помощью микродиссекции проб отдельных хромосом и их районов и использования их как для секвенирования и привязки данных NGS геномов ряда видов к хромосомам, изучения таких важных компонент геномов как половые хромосомы, гетерохроматин, прицентромерные районы и добавочные хромосомы, так и анализа внутрихромосомных эволюционных перестроек. Эволюция необычных элементов кариотипа - половых хромосом и добавочных хромосом - является одним из интереснейших направлений в современной цитогенетике. С развитием методов секвенировования нового поколения появилась возможность изучать половые хромосомы, непосредственно определяя состав хромосомспецифических библиотек ДНК. У нас в коллекции большой набор как культур клеток, хромосом, так и хромосомспецифических библиотек разных видов позвоночных, а также имеется многолетнее сотрудничество и договоренность об обмене материалом и опытом с ведущими международными лабораториями в Англии, Италии, США, Испании, Чехии, Нидерландов и Китая. В своей работе мы будем пользоваться разработанными в Отделе разнообразия и эволюции животных программами для анализа данных секвенирования. В рамках идеологии проекта Genome 10K мы начали работы с древней ДНК видов млекопитающих, прежде всего Сибири. Естественно, что работать с «хромосомными» компонентами вымерших животных невозможно. Однако и анализ фрагментов ДНК видов вымершей плейстоценовой мегафауны, как и «предков» современной фауны, в том числе предков домашних видов представляет огромный интерес. Полученные нами данные о ДНК «фауны» знаменитой Денисовой пещеры, описание митохондриального генома древнейшей «собаки» из Разбойничьей пещеры Алтая и сравнение его с аналогичными геномами древних и современных собак и волков (Druzhkova et al., Ancient DNA analysis affirms the canid from Altai as a primitive dog. PLoS ONE 8(3): e57754, (2013). O.Thalmann,… A.Graphodatsky, A. Druzhkova,… Wayne RK., Complete mitochondrial genomes of ancient canines suggest a European origin of domestic dogs. Science, (2013) Vol. 342 no. 6160 pp. 871-874) оказались весьма перспективными, в том числе и для решения актуальных задач предлагаемого здесь проекта, как в плане изучения геномов вымерших видов плейстоцена и голоцена так и проблем доместикации таких видов, как собака и лошадь, в значительной степени определивших историю человека. В определенном смысле абсолютную научную новизну планируемых нами работ обеспечивает созданная нашим коллективом одна из крупнейших в мире коллекция культур клеток, образцов тканей и ДНК более чем 500 видов позвоночных, большая часть из которых уникальна, т.е. отсутствует где-либо еще. Важно отметить, что практически все свои работы мы ведем в самом тесном взаимодействии с крупными зарубежными центрами и группами исследователей.

Ожидаемые результаты
В ходе реализации настоящего настоящего проекта мы планируем получить следующие конкретные результаты: 1. Построение насыщенных генетическими маркерами карт радиационных гибридов для двух видов камелид (альпаки и одногорбого верлюда) путем создания панелей радиационных гибридов на основе слияния таргетной линии клеток с линией фибробластов китайского хомячка с тимидинкиназной недостаточностью и картировании панели с помощью высокопроизводительных методов генотипирования ОНП чипов или секвенирования. Группа Мозоленогих, занимает базальное положение в отряде Китопарнокопытных, и является исключительно важной для понимания эволюции самого отряда и всей группы Лавразиотерий. Картирование геномов камелид открывает возможности для современных генетических исследований и для применения их результатов для идентификации и исследования генетических аномалий, фенотипических признаков и для племенного отбора. 2. Изучение внутрихромосомных перестроек, представителей всех семейств отряда Китопанокопытные (Cetartiodactyla), обнаружение «горячих точек» эволюции хромосом общего предка жвачных (Ruminantia). В качестве объектов исследования для выявления эволюционных точек разрывов хромосом выбраны: индийский мунтжак (Muntiacus muntjak), который имеет наименьшее число хромосом у млекопитающих (2n = 6); жираф (Giraffa camelopardalis), как представитель базального семейства инфраотряда высшие жвачные; и малый оленек (Tragulus javanicus), как представитель базального семейства подотряда жвачных. С помощью биоинформатического анализа отобраны предковые для жвачных эволюционные точки разрывов хромосом – те районы, которые в начале эволюции жвачных были разорваны, а затем вновь соединены в ином сочетании или ориентации. Для определения предполагаемых точек разрыва хромосом будут использованы 9 сборок геномов жвачных, доступных в базе данных геномного секвенирования (G10K). Предположительно, используя фланкирующие район BAC-клоны коровы, мы локализуем не менее 80 точек перестроек, которые являются предположительно специфичными для жвачных, используя сборки семи жвачных и пяти нежвачных видов. Для построения сравнительной карты высокого разрешения Х хромосомы кариотипов Китопарнокопытных будут выбраны ВАС-клоны коровы с наиболее консервативными районами этой хромосомы с интервалом 1-2 мегабазы и локализованы на хромосомах видов из каждого семейства отряда. Можно надеяться что идентификация структурных изменений генома, позволит связать эти изменения с морфологической эволюцией парнокопытных, например появлением рубца у жвачных (важнейшего органа, имеющий огромное значение в сельском хозяйстве). 3.С помощью микродиссекционных библиотек и локализаци BAC-клонов будут выявлены внутрихромосомные перестройки, включая установление взаимной ориентации сегментов, и эволюционно новых центромер (ЭНЦ) в наиболее активно эволюционирующей группе млекопитающих – полевковые (Arvicolinae, Cricetidae, Rodentia). С помощью программы анализа данных NGS (секвенирования нового поколения) хромосомспецифичных библиотек будут определены межхромосомные перестройки в геноме копытного лемминга (Dicrostonyx torquatus, вида с необычной системой определения пола и добавочными хромосомами) относительно других видов грызунов. 4. На основании данных NGS микродиссекционных и сортинговых библиотек будут сравнены половые и добавочные хромосомы разных видов рептилий и рыб и изучена эволюция элементов кариотипа, содержащих полоопределяющие гены. Особенно большой интерес представляют разные виды ящериц, поскольку в этом таксоне встречается несколько разных систем и типов определения пола. Помимо рептилий мы сосредоточимся на половых хромосомах рыб, т.к. это самый многочисленный класс позвоночных с огромным разнообразием систем определения пола, остающийся большей частью совершенно неисследованным. Мы попытаемся понять, почему системы определения пола рыб обладают высокой эволюционной пластичностью, при том, что в некоторых группах амниот, например у млекопитающих, половые хромосомы становятся одной из самых консервативных компонент генома. Кроме того у нас имеется коллекция животных с добавочными хромосомами, состав которых не изучен. С помощью методов секвенирвания нового поколения мы прольем свет на происхождение и эволюцию этих загадочных элементов. 5.Будут продолжено наше участие в международных проектах по секвенированию геномов красной лисицы (Vulpes vulpes), серого кита (Eschrichtius robustus) и байкальской нерпы ((Pusa sibirica), в которых мы обеспечиваем ресурсную (образцы тканей и высокомолекулярной ДНК) и цитогенетическую часть. Естественно, что не все в этих крупных коллаборативных работах зависит от нашего коллектива, однако можно надеяться, что несколько достойных публикаций появятся в отчетный трехлетний период. 6.Будет выделена ДНК (и проведено секвенирование на платформе MiSeq) из костных образцов лошадей, волков, медведей, бизонов, яков и косуль из различных районов Евразии, но прежде всего из знаменитых пещер Алтая (Денисовская, Разбойничья и т.д.), где они присутствуют в наиболее сохранном виде. Возраст образцов датируется 80 и менее тыс.лет. Будут проанализированы митохондриальные геномы и фенотипически наиболее интересные локусы ядерных геномов. С помощью метода RAD-seq проведено исследование изменения структуры популяций у этих видов в эволюционной и временной динамике. Помимо этого, начата работа по изучению ДНК лошадей из известнейших до- и исторических захоронений Евразии. Лошадь – вид доместицированный именно в степях Алтая и Северного Казахстана и у нас есть возможность изучить этот процесс в динамике, от лошадей до одомашнивания, лошадей многочисленных кочевых народов, сменяющих друг друга на протяжении 4-х тысяч лет (время одомашнивания лошади), из знаменитых курганных захоронений типа Укока, до современных пород. Собственно предлагаемые нами походы и ожидаемые результаты сводятся к описанию биологических ресурсов, прежде всего России и сопредельных территорий, на геномном и хромосомном уровне. Отнюдь не исключено, что другие виды и группы будут вовлечены в процесс изучения. Залог успеха проекта заключается в том, что коллектив уже доказал свою способность работать с хромосомами и геномами видов всех таксонов позвоночных, рыб, амфибий, птиц и рептилий. Участники проекта имеют значимые публикации по хромосомике и геномике млекопитающих от утконосов и сумчатых Австралии, ленивцев и муравьедов Южной Америки, до слонов Африки и Азии и китообразных мирового океана, естественно включая почти все виды и таксоны млекопитающих России. Предполагается, что все планируемые нами работы, точно также как и предшествующие, будут вестись в тесном сотрудничестве с ведущими мировыми специалистами и центрами и будут соответствовать достаточно высокому мировому уровню. По итогам трехлетнего цикла мы запланировали опубликование 9 работ, надеясь при этом что публикаций будет больше, в том числе и в журналах достаточно высокого статуса.


 

ОТЧЁТНЫЕ МАТЕРИАЛЫ


Аннотация результатов, полученных в 2016 году
Быстрая хромосомная эволюция полевок рода Lasiopodomys. Родовой статус Lasiopodomys и его разделение на подроды Lasiopodomys (L. mandarinus, L. brandtii) и Stenocranius (L. gregalis, L. raddei) не являются общепризнанными из-за противоречий в морфологических и молекулярных данных. Чтобы получить цитогнетические доказательства родового статуса Lasiopodomys и его разделения на подроды, а также для того, чтобы проверить гипотезу о происхождении комплекса половых хромосом у L. mandarinus путем транслокации аутосом на половые хромосомы, мы гибридизовали хромосомные пэйнтинг-пробы темной полевки (Microtus agrestis, MAG) и копытного лемминга (Dicrostonyx torquatus, DTO) на метафазные хромосомы самки китайской полевки (L. mandarinus, 2n = 47) и самца полевки Брандта (L. brandtii, 2n = 34). Дополнительно мы провели локализацию набора проб копытного лемминга на хромосомы самки узкочерепной полевки (L. gregalis, 2n = 36). Межвидовой хромосомный пэйнтинг позволил выявить 3 цитогенетические ассоциации (MAG12/18, 17a/19 и 22/24), которые могут подтверждать родовой статус Lasiopodomys и указывают на эволюционную принадлежность L. gregalis этому роду. Кроме того, в кариотипах всех трех видов сохранились ассоциации MAG1bc/17b и 2/8a, выявленные ранее в кариотипах всех изученных полевковых. Ассоциации MAG2a/8a/19b, 8b/21, 9b/23, 11/13b, 12b/18, 17a/19a и 5 разрывов предковых сегментов характерны для подрода Lasiopodomys. Мы также подтвердили гипотезу о происхождении комплекса половых хромосом у L. mandarinus путем транслокации аутосом на половые хромосомы. Две последовательные транслокации аутосом на предковую Х хромосому у L. mandarinus привели к формированию комплекса, состоящего из neo-X1, neo-X2 и neo-X3 элементов. Наши результаты показывают, что род Lasiopodomys представляет собой яркий пример быстрой хромосомной эволюции, затрагивающей как аутосомы, так и половые хромосомы. Множественные перестройки кариотипа, включавшие Робертсоновские слияния, разрывы хромосом, инверсии и накопление гетерохромосматина, привели к формированию кариотипов современных видов за очень короткий эволюционный промежуток времени около 2.4 млн. лет. Хромосомы и геномы ящериц рода Anolis. У ящериц зафиксировано удивительное разнообразие систем определения пола. Чешуйчатые с точки зрения геномов изучены недостаточно хорошо: геном только одного вида был секвенирован, проанализован и отчасти собран (Anolis carolinensis). Род Anolis является разнообразным таксоном ящериц состоящим из более чем 400 видов, который часто используют в качестве модельного рода рептилий. Большинство видов этого рода обладают гомоморфными половыми хромосомами, причем система XY по-видимому эволюционировала из одной и той же пары аутосом и является общей для всего рода. В этой работе мы обнаружили основные тенденции эволюции половых хромосом у анолисов, цитогенетически проанализировав 9 видов. Особо интересными случаями оказались виды A. sagrei и A. pogus. С помощью проточного сортинга мы получили хромосом-специфические библиотеки A. carolinensis, A. sagrei и A. pogus. Сравнительный пэйнтинг между A. carolinensis (ACA) и A. sagrei показал наличие сигнала нескольких аутосом ACA на половых хромосомах A. sagrei, тогда как у A. pogus была обнаружена система X1X2Y, также включающая районы гомологии с аутосомами ACA. С помощью секвенирования нового поколения хромосомспецифических библиотек мы охарактеризовали содержание и структуру микрохромосом A. carolinensis и A. sagrei. Это позволило нам провести картирование незаякоренных скэффолдов A. carolinensis на микрохромосомы ACA. В итоге, объединив данные полученные из FISH и секвенирования мы смогли выяснить генетический состав хромосомспецефичных библиотек. Хромосомспецефичные библиотеки сложно изучать с помощью методов секвенирования, в первую очередь, из-за кросс-контаминаций. В этой работе был использован новый биоинформатический метод, который позволяет связывать цитогенетические данные и данные секвенирования посредством хромосомспецефичных проб. Этот метод может быть применен к любым видам, для которых необходимо провести геномное картирование скэффолдов. На все двенадцать микрохромосом ACA были картированы ранее незаякоренные скэффолды. Впервые было показано, что тринадцатая микрохромосома ACA является половой X хромосомой этого вида. Сравнительный анализ показал, что половые хромосомы A. sagrei претерпели слияние с тремя микроаутосомами, а часть материала Y-хромосомы была потеряна в результате вырождения. Что является неординарным случаем, слияния аутосом с половыми хромосомами происходят нечасто, а у близкородственных A. carolinensis и A. sagrei за короткий эволюционный период было обнаружено три слияния. У ACA все гомологи генов, регулирующих каскад определения пола у других позвоночных, были обнаружены на аутосомах. Половой каскад может регулировать сильно измененый паралог одного из этих генов, либо в каскад встроился новый ген-регулятор (как например у некоторых коститстых рыб). Кроме того, в первый год проекта мы начали работу по локализации специфических BAC-клонов на аутосомы и половые хромосомы видов разных таксонов китопарнокопытных, начали работу по конструированию карт хромосом верблюдов (альпака и одногорбый верблюд) с помощью радиационных гибридов, получению микродиссекционных библиотек и их локализации у видов полевок, получению с помощью DOP-PCR и WGA методов специфических библиотек В- и половых хромосом у различных видов позвоночных, продолжили изучение образцов древней ДНК лошадей, лосей и медведей.

 

Публикации

1. Гладких О.Л., Романенко С.А., Лемская Н.А., Сердюкова Н.А., ОБрайен П.С.М., Ковальская Ю.М., Сморкачева А.В., Голенищев Ф.М., Перельман П.Л., Трифонов В.А., Фергюсон-Смит М.А., Графодатский А.С. Rapid karyotype evolution in Lasiopodomys involved at least two autosome – sex chromosome translocations PLOS ONE, - (год публикации - 2016) https://doi.org/10.1371/journal.pone.0167653

2. Кичигин И.Г., Джиованнотти М., Макунин А.И., Нг Б.Л., Кабилов М.Р., Тупикин А.Е., Баручи В.К., Сплендиани А., Руджери П., Ренс В., ОБрайен П.С.М., Фергюсон-Смит М.А., Графодатский А.С., Трифонов В.А. Evolutionary dynamics of Anolis sex chromosomes revealed by sequencing of flow sorting-derived microchromosome-specific DNA Molecular Genetics and Genomics, Volume 291, Issue 5, pp 1955–1966 (год публикации - 2016) https://doi.org/10.1007/s00438-016-1230-z


Аннотация результатов, полученных в 2017 году
За текущий год была проделана работа по картированию Х хромосом 18 представителей Китопарнокопытных. Был поведен анализ перестроек, поиск филогенетических маркеров, построены предковые Х хромосомы. На основании этой работы была опубликована статья «X chromosome evolution in Cetartiodactyla». Так же в ходе работы по изучению Х хромосом было выявлено уникальное расположение ядрышкового организатора на половых хромосомах яванского оленька, а так же выявлено разнообразие морфологии Х хромосомы представителей Bovidae. В рамках этого проекта были локализованы библиотеки хромосом одногорбого верблюда и человека на хромосомах овцебыка - единственного сохранившегося представителя мегафауны.Сейчас идет активная подготовка к публикации этих данных. Началась работа по выявлению эволюционных точек разрывов хромосом жвачных локализацией BAC-клонов на метафазных хромосомах яванского оленька и жирафа. На данный момент уже локализована большая часть зондов. Закончена локализация проб, соответствующих q-плечу хромосомы MOEC1 (=MAG2/8=AAK1) и хромосоме MOEC7 (=MAG3=AAK3), на хромосомах 17 оставшихся видов полевковых. Выполнено полное описание внутрихромосомных перестроек внутри консервативных сегментов, гомологичных этим участкам хромосом у 28 видов полевковых. Показано преобладание сдвигов центромер в участках, гомологичных предковых хромосомам полевковых AAK1 и AAK7 (= MAG1=MOEC1p) и парацентрических инверсий в районе, гомологичном AAK3. Опубликована статья, содержащая часть результатов работы по изучению района AAK7 Проведено детальное описание кариотипа хомячка Соколова с использованием С- и G-бэндинга, хромосомного пэйнтинга. Данные подтверждают видовой статус хомячка Соколова и указывают на то, что его кариотип сформирован, по крайней мере, за счет 4 робертсоновских событий и одного центромерного сдвига. Результаты представлены в статье Ведется работа по описанию хромосомного веера Ellobius alaicus. Сборка геномов млекопитающих до уровня хромосом является чрезвычайно актуальной проблемой учитывая, чточисло полностью отсеквенированных геномов уже приближается к сотне. На настоящий момент нет генома верблюжьих собранного до уровня хромосом. Одним из проверенных методов физического картирования необходимого для полноценной хромосомной сборки генома является построение карты радиационных гибридов. Мы продолжили работу с полученными клонами радиационных гибридов одногорбого верблюда. Мы протестировали 186 клонов 5000 РАД и 93 клона 15000 РАД с помощью 44 маркеров, равномерно распределенных по геному. Проанализировав результаты мы отобрали клоны с наилучшей воспроизводимостью ПЦР, с наименьшим числом расхождений между повторными ПЦР и с продуктивной для дальнейшего анализа частотой удержания фрагментов. В результаты мы сформировали финальные панели радиационных гибридов Camelus dromedarius 5000 РАД и 15000РАД со средней частотой удержания фрагментов 50% и 39%. Комбинация панелей может быть использована для получения карт высокого уровня разрешения. Мы продолжили работы по разработке маркеров для картирования хромосомы 16 верблюда и работы по применению методик сборки генома третьего поколения. Мы дополнительно провели анализ карт радиационных гибридов для хромосом Х и 16 альпаки. Получены суспензии хромосом для эндемичного вида Camelus ferus. Разработка таких ресурсов необходима для дальнейшего шага исследования геномов верблюжьих. Полный сиквенс генома позволяет обнаруживать генетические основы биологических особенностей различных видов млекопитающих, а также сложных процессов таких как видобразование и доместикация. В сотрудничестве с Университетом Урбана-Шампейн (США) в составе международной команды, мы провели полное секвенирование генома лисицы (Vulpes vulpes). Для анализа геномных данных мы использовали полученные ранее данные сравнительного хромосомного пейнтинга и тонкого картирования хромосом лисицы. Создание сборки генома позволило провести дальнейший анализ генетических основ доместикации в рамках многолетнего эксперимента по выведению контрастных линий доместицированных и агресивных лисиц и выявить 113 районов генома, различающих данные популяции. Многие из генов в этих районах связаны наследственными растройствами у человека. Идентификация таких таргетных районов позволит проводить дальнейшие исследования генов, отвечающих за доместикацию направленно. Исследование половых и добавочных хромосом разных видов позвоночных с использованием методов высокопроизводительного секвенирования выявило необычные детали эволюции этих необычных элементов генома: мы предположили происхождение добавочных хромосом из половых хромосом у желтогорлой мыши Apodemus flavicollis и копытного лемминга Dicrostonyx torquatus ; выявили неравномерные скорости эволюции добавочных хромосом лисицы и енотовидной собаки, а также обнаружили необычно высокие скорости преобразований половых хромосом у игуановых ящериц. Мы разработали технологию поиска хромосомспецифичных повторов для характеризации кариотипов с большим числов похожих элементов. Для лошади Оводова, возрастом 32 тыс. лет из Денисовой пещеры, Алтай, проведено выделение ДНК, высокопроизводительное секвенирование библиотек, обогащенных целевыми фрагментами. Биоинформационный анализ показал, что E. ovodovi ближе к зебрам, чем к ослам (E. asinus, E. hemionus) или киангу E. kiang, в то время как предыдущее исследование (Vilstrup et al., 2013) указывает на базальное положение среди них. Наши данные расширили географический ареал и время существования вида E. ovodovi. Анализ фрагмента Д-петли митохондриальной ДНК из 17 овечьих костей (~ 4000-1000 лет), обнаруженных в археологических комплексах на юге Алтая (Западная Сибирь), показал, что 15 образцов относятся к ранее описанным линиям A, B, C, D и E и два образца имеют уникальные гаплотипы и имеют базальное положение относительно остальной части анализируемых образцов. Большое разнообразие гаплотипов может свидетельствовать, что Алтайский регион, был транспортным путем более 1000 лет назад.

 

Публикации

1. Билтуева ЛС, Прокопов ДЮ, Макунин АИ, Комиссаров АС, Кудрявцева АВ, Лемская НА, Воробьева НВ, Сердюкова НА, Романенко СА, Гладких ОЛ, Графодатский АС, Трифонов ВА Genomic Organization and Physical Mapping of Tandemly Arranged Repetitive DNAs in Sterlet ( Acipenser ruthenus ) Cytogenet Genome Res, 152: 148-157, 2017 (год публикации - 2017)

2. Дружкова АС, Макунин АИ, Воробьева НВ, Васильев СК, Оводов НД, Шуньков МВ, Трифонов ВА, Графодатский АС Complete mitochondrial genome of an extinct Equus (Sussemionus) ovodovi specimen from Denisova cave (Altai, Russia) MITOCHONDRIAL DNA PART B: RESOURCES, Volume 2, Issue 1, Pages 79-81 (год публикации - 2017) https://doi.org/10.1080/23802359.2017.1285209

3. Дымова МА, Задорожный АВ, Мишукова ОВ, Храпов ЕА, Дружкова АС, Трифонов ВА, Кичигин ИГ, Тишкин АА, Грушин СП, Филипенко МЛ Mitochondrial DNA analysis of ancient sheep from Altai Anim Genet, 48(5): 615-618 (год публикации - 2017) https://doi.org/10.1111/age.12569

4. Поплавская НС, Романенко СА, Сердюкова НА, Трифонов ВА, Янг Ф, Ни В, Ванг Дж, Банникова АА, Суров АВ, Лебедев ВС Karyotype Evolution and Phylogenetic Relationships of Cricetulus sokolovi Orlov et Malygin 1988 (Cricetidae, Rodentia) Inferred from Chromosomal Painting and Molecular Data Cytogenet Genome Res, 152: 65-72 (год публикации - 2017) https://doi.org/10.1159/000477521

5. Проскурякова АА, Кулемзина АИ, Перельман ПЛ, Макунин АИ, Ларкин ДМ, Фарре М, Кукекова АВ, Джонсон Дж.Л, Лемская НА, Беклемишева ВР, Рёлке-Паркер МЕ, Белицци Дж., Райдер ОА, ОБрайен СДж., Графодатский АС X chromosome Evolution in Cetartiodactyla GENES, 8(9): 216 (год публикации - 2017) https://doi.org/10.3390/genes8090216

6. Райчич М, Романенко СА, Карамышева ТВ, Благоевич Дж, Аднадевич Т, Будински И, Богданов АС, Трифонов ВА, Рубцов НБ, Вуёшевич М. The origin of B chromosomes in yellow-necked mice (Apodemus flavicollis) - Break rules but keep playing the game PLoS ONE, 12(3): e0172704 (год публикации - 2017) https://doi.org/10.1371/journal.pone.0172704

7. Романенко СА, Сердюкова НА, Перельман ПЛ, Павлова СВ, Булатова НШ, Голенищев ФН, Стэнион Р, Графодатский АС Intrachromosomal rearrangements in rodents from the perspective of comparative region-specific painting Genes, Genes 8(9): 215 (год публикации - 2017) https://doi.org/10.3390/genes8090215


Аннотация результатов, полученных в 2018 году
Полный сиквенс генома позволяет обнаруживать генетические основы биологических особенностей различных видов млекопитающих, а также сложных процессов таких как видобразование и доместикация. В сотрудничестве с Университетом Урбана-Шампейн (США) в составе международной команды, мы провели полное секвенирование генома лисицы (Vulpes vulpes). Для анализа геномных данных мы использовали полученные ранее данные сравнительного хромосомного пейнтинга и тонкого картирования хромосом лисицы. Создание сборки генома позволило провести дальнейший анализ генетических основ доместикации в рамках многолетнего эксперимента по выведению контрастных линий доместицированных и агресивных лисиц и выявить 113 районов генома (включая ген SorCS1), различающих данные популяции. Многие из генов в этих районах связаны наследственными расстройствами у человека. Идентификация таких таргетных районов позволит проводить дальнейшие исследования генов, отвечающих за доместикацию направленно. Проведено секвенирование В хромосом лисы и китайской енотовидной собаки, что позволило получить список геномных районов и генов, лежащих на этих хромосомах. Результаты хорошо согласуются с более ранними исследованиями и в то же время значительно расширяют наши представления о составе добавочных хромосом этих видов. Для лисицы данные о геномных районах В хромосом впервые были верифицированы с привлечением данных полногеномного секвенирования. Секвенирование трех В хромосом с одной метафазной пластинки лисицы показало, что одна из В хромосом является частично вырожденной, в то время как две других несут полные наборы геномных районов. Сравнение состава генов на В хромосомах шести видов млекопитающих, исследованных к настоящему моменту, показало обогащение регуляторами клеточного деления, раннего развития, а также синапса нейронов. Также обнаружены пять случаев независимого повторного включения генов в состав B-хромосом у разных видов. Большинство из этих генов относятся к одной из перепредставленных категорий. Полученные данные поддерживают гипотезу об активной вовлеченности В-хромосомных копий генов в их раннюю эволюцию. В цитогенетике всегда существует потребность в быстром и эффективном методе, который одновременно выявлял бы разные особенности хромосом. Мы представили новый метод CDAG (C-banding by Denaturing After G-banding), который может быть эффективно выполнен на одной метафазе. На первом этапе получают GTG-бэндинг и регистрируют метафазу, затем препараты денатурируют при 700C в присутствии формамида, и ренатурируют в растворе соли 2xSSC при 600C и затем наносят флуоресцентные красители: DAPI и хромомицин A3. CDAG особенно ценен для идентификации AT- и GC-обогащенного конститутивного гетерохроматина у разных млекопитающих с уникальными кариотипическими характеристиками, такими как крупные центромерные и теломерные блоки, выдающийся интерстициальный гетерохроматин, полностью гетерохроматиновые хромосомные плечи и преимущественно гетерохроматиновые хромосомы. Основными преимуществами разработанного нами метода являются легкая воспроизводимость протокола, надежная идентификация C-позитивной хромосомы и характеристика состава гетерохроматина (насыщенный AT- / GC). Предложенный подход дает возможность получить более подробную характеристику конститутивного гетерохроматина в отличие от стандартныого метода CBG. Путем секвенирования микродиссектированных хромосом были исследованы малая сверхчисленная хромосома человека, а также добавочные хромосомы двух видов мышей рода Apodemus. Для добавочной хромосомы человека показана гомология с прицентромерным районом длинного плеча хромосомы 15 длиной около 12 млн п.н., а также локализация точек разрыва в альфа-сателлитной ДНК. Впервые показано, что разработанный метод биоинформатического анализа данных секвенирования отдельных хромосом является перспективной альтернативой существующим методам описания хромосомных аномалий человека. Добавочные хромосомы Apodemus flavicollis и A. peninsulae состоят из более чем 20 районов с десятками генов, при этом единственным общим геном является Vrk1, кодирующий киназу-регуятор клеточной пролиферации. Общие черты добавочных хромосом - обогащение повторенными последовательностями, в частности тандемными и эндоретровирусами; а также накопление большого числа мутаций, ведущих к псевдогенизации. Также выявлена вариабельность состава добавочных хромосом на уровне популяций A. flavicollis, а также между различными морфологическими типами внутри одной клетки у A. peninsulae Транслокации половых хромосом на аутосомы – редкие события. Единственный известный пример среди узконосых обезьян (Catarrhini) – гривистый тонкотел или серебристый лангур (Trachypithecus cristatus). У этого вида произошла реципрокная транслокация Y-хромосомы и аутосомы 1. В результате перестройки сформировалась система половых хромосом X1X2Y1Y2. Известно, что существует как минимум три хромосомных варианта интактной хромосомы 1. С помощью панели из более чем 150 человеческих BAC-клонов мы охарактеризовали с высокой степенью разрешения транслоцированные варианты (Y1 и Y2) и полимфорные формы интактной хромосомы 1. Выполнено описание внутрихромосомных перестроек внутри ряда консервативных сегментов у 28 видов полевковых. Показано преобладание сдвигов центромер в участках, гомологичных предковых хромосомам полевковых AAK1 и AAK7 (= MAG1=MOEC1p) и парацентрических инверсий в районе, гомологичном AAK3. Было показано необычное расположение ядрышек на двух половых хромосомах представителя Жвачных (Ruminantia) Яванского оленька (Tragulus javanicus). При помощи FISH (fluorescence in situ hybridization) анализа с пробами, содержащими последовательности рибосомной ДНК (18S, 5.8S, и 28S), выявили единственный сайт локализации на двух половых хромосомах – Х и Y. Мы продолжили работу с полученными клонами радиационных гибридов одногорбого верблюда. Мы протестировали 186 клонов 5000 РАД и 93 клона 15000 РАД с помощью 44 маркеров, равномерно распределенных по геному. Проанализировав результаты мы отобрали клоны с наилучшей воспроизводимостью ПЦР, с наименьшим числом расхождений между повторными ПЦР и с продуктивной для дальнейшего анализа частотой удержания фрагментов. В результаты мы сформировали финальные панели радиационных гибридов Camelus dromedarius 5000 РАД и 15000РАД со средней частотой удержания фрагментов 50% и 39%. Комбинация панелей может быть использована для получения карт высокого уровня разрешения. Добавочные хромосомы рептилий были описаны только на цитогенетическом уровне и никогда не были секвенированы или проанализированы на молекулярном уровне. Один из модельных видов чешуйчатых с доступной полной сборкой генома — Anolis carolinensis. Целью нашей работы являлось описание генетического материала дополнительных хромосом A. carolinensis. Мы подтвердили присутствие B хромосом у этого вида с помощью обратного пэйнтинга и анализа синаптонемных комплексов. Для анализа последовательностей B хромосомы мы применили высокопроизводительное секвенирование. Черты B хромосомы анолиса схожи с чертами дополнительных хромосом из других таксонов: на ней находятся гены связанные с клеточным делением (INCENP и SPIRE2), она обогащена специфичными повторами и сильно псевдогенезирована. В 2018 г.опубликовано 10 статей, еще две статьи находятся на рецензии. 1. Capozzi O, Stanyon R, Archidiacono N, Ishida T, Romanenko SA, Rocchi M. Rapid emergence of independent “chromosomal lineages” in silvered-leaf monkey triggered by Y/autosome translocation. (doi: 10.1038/s41598-018-21509-4) Sci Reports 8: 3250, 2018 2. Perelman PL, Pichler R, Gaggl A, Larkin DM, Raudsepp T, Alshanbari F, Holl HM, Brooks SA, Burger PA, Periasamy K. Construction of two whole genome radiation hybrid panels for dromedary (Camelus dromedarius): 5000RAD and 15000RAD. (doi: 10.1038/s41598-018-20223-5) Sci Reports 8: 1982, 2018 3. Proskuryakova AA, Kulemzina AI, Perelman PL, Serdukova NA, Ryder OA, Graphodatsky AS. The case of X and Y localization of nucleolus organizer regions (NORs) in Tragulus javanicus (Cetartiodactyla, Mammalia). (doi: 10.3390/genes9060312) Genes 9(6): 312, 2018 4. Pavlova SV, Biltueva LS, Romanenko SA, Lemskaya NA, Shchinov AV, Abramov AV, Rozhnov VV. First cytogenetic analysis of lesser gymnures (Mammalia, Galericidae, Hylomys) from Vietnam. (doi: 10.3897/CompCytogen.v12i3.27207) Comp Cytogen 12(3): 361-372, 2018 5. Kukekova AV, Johnson JL, Xiang X, Feng S, Liu S, Rando HM, Kharlamova AV, Herbeck Y, Serdyukova NA, Xiong Z, Beklemischeva V, Koepfli K-, Gulevich RG, Vladimirova AV, Hekman JP, Perelman PL, Graphodatsky AS, O’Brien SJ, Wang X, Clark AG, Acland GM, Trut LN, Zhang G. Red fox genome assembly identifies genomic regions associated with tame and aggressive behaviours. (doi: 10.1038/s41559-018-0611-6) Nat Ecol Evol. 2018;2(9):1479-91. 6. Makunin AI, Romanenko SA, Beklemisheva VR, Perelman PL, Druzhkova AS, Petrova KO, Prokopov DY, Chernyaeva EN, Johnson JL, Kukekova AV, Yang F, Ferguson-Smith MA, Graphodatsky AS, Trifonov VA. Sequencing of supernumerary chromosomes of red fox and raccoon dog confirms a non-random gene acquisition by B chromosomes. (doi: 10.3390/genes9080405) Genes 9(8): 405, 2018 7. Makunin AI, Rajičić M, Karamysheva TV, Romanenko SA, Druzhkova AS, Blagojević J, Vujošević M, Rubtsov NB, Graphodatsky AS, Trifonov VA. Low-pass single-chromosome sequencing of human small supernumerary marker chromosomes (sSMCs) and Apodemus B chromosomes. (doi: 10.1007/s00412-018-0662-0) Chromosoma 127(3): 301–311, 2018 8. Lemskaya NA, Kulemzina AI, Beklemisheva VR, Biltueva LS, Proskuryakova AA, Hallenbeck JM, Perelman PP, Graphodatsky AS. A combined banding method that allows the reliable identification of chromosomes as well as differentiation of AT- and GC-rich heterochromatin. Chromosome Res, 2018, doi: 10.1007/s10577-018-9589-9 9. Kichigin IG, Lisachov AP, Giovannotti M, Makunin AI, Kabilov MR, O’Brien PCM, Ferguson-Smith MF, Graphodatsky AS, Trifonov VA. First report on B chromosome content in a reptilian species: the case of Anolis carolinensis. Mol Genet Genomics, 2018, doi: 10.1007/s00438-018-1483-9 10. Romanenko S, Serdyukova N, Perelman P, Trifonov V, Golenishchev F, Bulatova N, Stanyon R, Graphodatsky A. Multiple intrasyntenic rearrangements and rapid speciation in voles. (doi: 10.1038/s41598-018-33300-6) Sci Reports 8: 14980, 2018 Farré M, Kim J, Proskurjakova AA, Kulemzina AI, Zhang Y, Huang Z, Yao X, Fang X, Rando HM, Perelman P, Li X, Kukekova AV, Zhao W, Zhang G, Wang J, O’Brien SJ, Graphodatsky AS, Ma J, Lewin HA, Larkin DM Coevolution of chromosome changes and gene regulation in ruminants. Genome Res (in press) Elbers JP, Rogers MF, Perelman PL, Horin P, Corander J, Murphy D, Burger PA Improving Illumina assemblies with Hi-C and long-reads: an example with the North African dromedary. Molecular Ecology Resources (in press)

 

Публикации

1. Капоци О, Стэнион Р, Арчидияконо Н, Ишида Т, Романенко СА, Роччи М. Rapid emergence of independent "chromosomal lineages" in silvered-leaf monkey triggered by Y/autosome translocation Scientific Reports, Том: 8 Номер статьи: 3250 (год публикации - 2018) https://doi.org/10.1038/s41598-018-21509-4

2. Кичигин И.Г., Лисачев А.П., Джиованноти М., Макунин А.И., Кабилов М.Р., ОБрайен П.С.М., Фергюсон-Смит М.Ф., Графодатский А.С., Трифонов В.А. First report on B chromosome content in a reptilian species: the case of Anolis carolinensis Molecular Genetics and Genomics, - (год публикации - 2018) https://doi.org/10.1007/s00438-018-1483-9

3. Кукекова АВ, Джонсон ДЛ, Ксианг К, Фенг С, Лю С, Рандо ГМ, Харламова АВ, Гербек Ю, Сердюкова НА, Ксионг З, Беклемишева ВР, Перельман ПЛ, Графодатский АС, ОБрайен СД, Ванг К, Кларк АГ, Окланд ГМ, Трут ЛН, Занг Г. Red fox genome assembly identifies genomic regions associated with tame and aggressive behaviours Nature Ecology and Evolution, Том: 2 Выпуск: 9 Стр.: 1479-1491 (год публикации - 2018) https://doi.org/10.1038/s41559-018-0611-6

4. Лемская НА, Кулемзина АИ, Беклемишева ВР, Билтуева ЛС, Проскурякова АА, Халленбек ДМ, Перельман ПЛ, Графодатский АС. A combined banding method that allows the reliable identification of chromosomes as well as differentiation of AT- and GC-rich heterochromatin Chromosome Research, - (год публикации - 2018) https://doi.org/10.1007/s10577-018-9589-9

5. Макунин АИ, Райчич М, Карамышева ТВ, Романенко СА, Дружкова АС, Благоевич Д, Вуешевич М, Рубцов НБ, Графодатский АС, Трифонов ВА Low-pass single-chromosome sequencing of human small supernumerary marker chromosomes (sSMCs) and Apodemus B chromosomes Chromosoma, Том: 127 Выпуск: 3 Стр.: 301-311 (год публикации - 2018) https://doi.org/10.1007/s00412-018-0662-0

6. Макунин АИ, Романенко СА, Беклемишева ВР, Перельман ПЛ, Дружкова АС, Петрова КО, Прокопов ДЮ, Черняква ЕН, Джонсон ДЛ, Кукекова АВ, Янг Ф, Фергюсон-Смит МА, Графодатский АС, Трифонов ВА Sequencing of supernumerary chromosomes of red fox and raccoon dog confirms a non-random gene acquisition by B chromosomes GENES, Том: 9 Выпуск: 8 (год публикации - 2018) https://doi.org/10.3390/genes9080405

7. Павлова СВ, Билтуева ЛС, Романенко СА, Лемская НА, Шинов АВ, Абрамов АВ, Рожнов ВВ. First cytogenetic analysis of lesser gymnures (Mammalia, Galericidae, Hylomys) from Vietnam Comparative Cytogenetics, Том: 12 Выпуск: 3 Стр.: 361-372 (год публикации - 2018) https://doi.org/10.3897/CompCytogen.v1213.27207

8. Перельман ПЛ, Пихлер Р, Гаггл А, Ларкин ДМ, Раудсепп Т, Алшанбари Ф, Холл ГМ, Брукс СА, Бургер ПА, Периасами К. Construction of two whole genome radiation hybrid panels for dromedary (Camelus dromedarius): 5000RAD and 15000RAD SCIENTIFIC REPORTS, Том: 8 Номер статьи: 1982 (год публикации - 2018) https://doi.org/10.1038/s41598-018-20223-5

9. Проскурякова АА, Кулемзина АИ, Перельман ПЛ, Сердюкова НА, Райдер ОА, Графодатский АС The case of X and Y localization of nucleolus organizer regions (NORs) in Tragulus javanicus (Cetartiodactyla, Mammalia) GENES, Том: 9 Выпуск: 6 (год публикации - 2018) https://doi.org/10.3390/genes9060312

10. Романенко С., Сердюкова Н., Перельман П., Трифонов В., Голенищев Ф., Булатова Н., Стэнион Р., Графодатский А. Multiple intrasyntenic rearrangements and rapid speciation in voles Scientific Reports, Том: 8, Номер статьи: 14980 (год публикации - 2018) https://doi.org/10.1038/s41598-018-33300-6

11. Фарре М., Ким Дж., Проскурякова АА., Занг И., Кулемзина АИ., Ли К., Жу И., Ксонг И., Джонсон Дж., Перельман П., Джонсон ВЕ., Варрен ВК., Кукекова АВ., Занг Г., ОБрайен СДж., Райдер ОА., Графодатский АС., Ма Дж., Люин ХА., Ларкин ДМ Evolution of gene regulation in ruminants differs between evolutionary breakpoint regions and homologous synteny blocks Genome Research, 29: 576-589 (год публикации - 2019) https://doi.org/10.1101/gr.239863.118

12. Беклемишева ВР, Перельман ПЛ, Лемская НА, Кулемзина АИ, Проскурякова АА, Бурканов ВН, ОБрайен СД, Графодатский АС Pinniped karyotype evolution substantiated by comparative chromo-some painting of 10 pinniped species (Pinnipedia, Carnivora) COMPARATIVE CYTOGENETICS, Том: 12 Выпуск: 3 Стр.: 306-307 Аннотация к встрече: O2 (год публикации - 2018) https://doi.org/10.3897/CompCytogen.v12i3.27448

13. Проскурякова АА, Кулемзина АИ, Перельман ПЛ, Макунин АИ, Лемская НА, Беклемишева ВР, Ларкин ДМ, Фарре М, Кукекова АВ, Райдер ОА, ОБрайен С, Графодатский АС. X chromosome evolution in Cetartiodactyla. COMPARATIVE CYTOGENETICS, Том: 12 Выпуск: 3 Стр.: 307-308 Аннотация к встрече: O3 (год публикации - 2018) https://doi.org/10.3897/CompCytogen.v12i3.27448

14. Трифонов ВА, Лисачев АП, Кичигин ИГ, Макунин АИ, Перейра ДК, Дружкова АС, Фергюсон-Смит МА, Джиованнотти М. Evolutionary sex chromosome translocations in amniotes COMPARATIVE CYTOGENETICS, Том: 12 Выпуск: 3 Стр.: 304-305 Аннотация к встрече: L7 (год публикации - 2018) https://doi.org/10.3897/CompCytogen.v12i3.27448

15. - Sequenced fox genome hints at genetic basis of behavior сайт РНФ, http://rscf.ru/ru/node/3313 (год публикации - )


Возможность практического использования результатов
не очевидно